Pak. J. Bot., 45(6): 2095-2100, 2013. Potential of napier grass (pennisetum purpureum) extracts as a natural herbicide



Yüklə 117.11 Kb.
PDF просмотр
tarix21.08.2017
ölçüsü117.11 Kb.

Pak. J. Bot., 45(6): 2095-2100, 2013. 

POTENTIAL OF NAPIER GRASS (PENNISETUM PURPUREUM)  

EXTRACTS AS A NATURAL HERBICIDE 

 

NORHAFIZAH MD ZAIN

1

, OH HONG YEW

1

, ISMAIL SAHID

2

 AND CHUAH TSE SENG

1*

 

 

1



Department of Agro-technology, Faculty of Agro-technology and Food Science,  

University of Malaysia Terengganu, 21030 Kuala Terengganu, Terengganu, Malaysia 

2

School of Environmental and Natural Resource Sciences, Faculty of Science and Technology,  

National University of Malaysia, 43600 Bangi, Selangor, Malaysia. 

*

Corresponding author’s e-mail: chuahts@umt.edu.my; Phone: +609-6683529, Fax: +609-6683434 

 

Abstract 

 

The present study was undertaken to investigate the herbicidal potential of aqueous and methanolic extracts of culm 

plus leaves and root of Pennisetum purpureum against two selected weed species; Hedyotis verticillata and Leptochloa 

chinensis under laboratory and glasshouse conditions. Extracts in different solvents and plant tissues exhibited markedly 

variable herbicidal activities against the target weed species. Methanolic and aqueous extracts of culm plus leaves inhibited 

germination of L. chinensis by 50% at a concentration of as low as 0.07 and 0.47g/L, respectively. Radicle growth of L. 

chinensis was strongly suppressed by aqueous root extract. Methanolic extract of culm plus leaves were proven highly 

phytotoxic to H. verticillata where green colour of the leaf disc was reduced by 50% at a concentration less than 0.1g/L. 

Aqueous root extracts at 150g/L concentration strongly inhibited seedling growth H. verticillata but less inhibition was 

provided by methanolic root extracts at this concentration. The results of this study suggest that P. purpureum extracts can 

be used as natural herbicide for weed management. 

 

Introduction 



 

Nowadays there is much emphasis on search for new 

methods of weed control which are safe, harmless, less 

expensive and use crop produced material. Allelopathy has 

emerged as an important area of weed research and has 

been accepted very recently as important ecological 

phenomena. The viable of weed management strategies 

through allelopathy is receiving increased national and 

international attention and needs to be extensively studied 

under laboratory as well as in the field conditions. There 

are many weed species that are allelopathic in nature. Some 

potential candidates with strong allelopathic properties 

have been found out and have shown promising prospect 

for natural herbicides development (Batish et al., 2007b). 

Several phytotoxic substances causing germination and/or 

growth inhibitions have been isolated from plant tissues 

(Turk & Tawaha, 2003; Soyler et al., 2012). It has been 

reported that phytotoxicity assays is an important approach 

for identifying plants that are likely to be a source of 

herbicidal compounds of interest (Ma et al., 2011). Several 

studies conducted by Saeed et al., (2010) have 

demonstrated the phytotoxity of organic solvent such as: 

methanol, ethanol, hexane and dichloromethane can be 

used to extract these herbicidal compounds. In addition, 

Chon & Kim (2002) have documented that the 

phytotoxicity of various plant parts may vary in their 

allelopathic potential. It is found that allelochemicals that 

inhibit the growth of some species at certain concentrations 

might in fact stimulate the growth of the same or different 

species at different concentrations (Narwal, 1994).  



Pennisetum purpureum also known as Napier grass is 

a perennial grass species found in tropical and subtropical 

areas throughout the world. Napier grass is considered a 

noxious weed in sugarcane production and an invasive 

weed to natural areas in south Florida (Anon., 2005). It 

contains a high amount of morphological variation within 

the species and noted as being the fastest-growing plant in 

the world (Mannetje & Jones 1992). According to Hanna 



et al., (2004), Napier Grass, however, is a major forage 

crop in the wet tropics of the world. Although this has 

been the primary use of napier grass, it has potential to 

produce greater dry-matter biomass yields than other 



Pennisetum grasses, which makes it a potential feedstock 

for cellulosic biofuel production (Hanna et al., 1999). 

Besides, Khan et al., (2006) has exploited the potential of 

napier grass varieties which provide an acceptable level of 

protection against stem borer, C. partellus in maize and 

sorghum in the ‘push–pull’ system. In Malaysia, Napier 

grass occurs widely along the roadsides, on wastelands 

and sometimes invades housing areas. The widespread 

occurrence of this weed may be attributed to its 

aggressive behaviour, very high seed production potential 

and suppressive effects on neighbouring plants through 

allelopathic interactions. It is suspected to release 

phytotoxins that inhibit the growth of the plant species 

nearby. Thus, the aim of this research is to get an 

understanding of herbicidal potential of napier grass 

(Pennisetum purpureum) extracts on 2 selected weed 

species of Leptochloa chinensis and Hedyotis verticillata 

under laboratory and glasshouse conditions. 

 

Materials and Methods 

 

Plant materials: Aboveground (culm plus leaves) and 

underground (root) tissues of P. purpureum were 

collected at a wasteland of Gong Badak, Kuala 

Terengganu. Plant materials were cleaned and cut into a 

length of 1cm, dried for 2 weeks under glasshouse 

conditions and stored at 4˚C prior to use.  



 

Preparation of crude aqueous and methanolic 

extracts: The conical flasks containing plant materials of 

P. purpureum were filled with distilled water or methanol 

and agitated vigorously for 24 hours at 200 rpm at 25

o



on an orbital shaker (Lab Companion SK-300). The 



aqueous or methanolic extracts were filtered through two 

layers of cheesecloth and centrifuged (Hitachi himac CR 



NORHAFIZAH MD ZAIN ET AL., 

2096 

22GII) at 9,000 rpm (15,300 x g) for 15 minutes. The 

supernatants were filter-sterilized through 0.22µm 

membrane filter to ensure that the extracts were free from 

microorganisms. For methanolic extracts, the filtrate was 

evaporated by using a rotary evaporator at 40°C to yield 

crude residues and the resulting yields of methanolic 

crude extract were weighed and recorded. All extracts 

were stored at 4

o

C before use.  



 

pH and simulated moisture stress medium preparation: 

The pH and osmotic potential of crude extracts were 

determined using a pH meter (WTW inoLab

®

 pH 720) and 



osmometer (Wescor Vapro

® 

5520), respectively, before 



being applied on the bioassay species. The pH medium was 

prepared by MES (2-(N-morpholino) ethansulfonic acid) 

and HEPES (4-2-hydroxyethyl-1-piperazineethansulfonic 

acid) (Reddy & Singh, 1992) while the moisture stress was 

simulated with solutions of polyethylene glycol (PEG) 

8000 (Mitchel, 1983).  

 

Germination test: The seeds of Hedyotis verticillata (25 

seeds)  and Leptochloa chinensis (50 seeds)  were placed 

separately in 9cm diameter Petri dishes lined with two 

layers of filter papers Whatman No. 1 and moistened with 

5ml of pH solutions (pH 5 – pH 8), osmostic potential 

solution (-0.20 MPa) or filtered crude extracts at 5, 10, 20, 

50 and 100 g/L. Petri dishes moistened with distilled 

water were treated as controls. The Petri dishes were kept 

in a growth chamber at 30/20

o

C with 12 hours 



photoperiod for 14 days. Seeds are considered germinated 

when attained a length of 1mm. At the end of the 

incubation period, the germinated seeds were recorded as 

a percentage of the total number of viable seeds used in 

each replication. The radicle length of germinated seeds 

were measured and recorded. The data were expressed as 

percentage of control. 

 

Leaf disc test: Leaf discs with 5mm diameter of 

selected bioassay species were punched from fully 

developed leaves.  Then, 5 leaf discs were dipped into 

each Petri dish containing methanolic or aqueous 

extracts of P. purpureum at a concentration of 50, 100 

and 150 g/L  in the growth chamber at 30/20

o

C with 12 



hours photoperiod. Distilled water was applied to the 

controls. After 48 or 72 hours, the degree retention of 

green coloration (a value) of leaf disc was measured by 

using a Minolta chromameter (model CR-400X Minolta 

Camera Co. Ltd., Japan). The data were expressed as 

percentage of control. 

 

Seedling growth test: Aqueous and methanolic extracts 

from both aboveground and underground tissues with 

concentrations at 50, 100 and 150 g/L were prepared. 

Homogenous seedlings from each bioassay species were 

selected and transplanted into 6 cm diameter cups with 

100g of soil (pH 4.5; composition: sand 30%, silt 61% 

and clay 9%). Extracts were applied on the soil surface 

for 28 days under glasshouse conditions. Seedlings that 

applied with distilled water were treated as controls. The 

aboveground parts of the plant tissues were harvested. 

Fresh weight and shoot height of the seedlings were 

determined and the data were expressed as percentages of 

their respective controls. 

 

Statistical analysis: Bioassays of each treatment were 

conducted in 5 replicates and arranged in completely 

randomized design. All the percentage data of 

germination and leaf disc tests were fitted to a logistic 

regression model, as follows (Kuk et al., 2002): 

 

Y = d/ (1 + [x/x0] b) 



 

where Y is percentage of germination/root length/green 

color retention, d is the coefficients corresponding to the 

upper asymptotes, b is the slope of the line, x0 is crude 

methanolic/aqueous extract concentration required to 

inhibit the germination/root length/ to reduce green color 

retention by 50% relative to untreated seeds/leaf discs, and 

x is the crude methanolic/aqueous extract concentration.  

 

Results and Discussions 

 

Effect of moisture stress and pH on germination of 

bioassay species: Water stress and pH may limits plant 

survival and early seedling growth by delaying its 

beginning or decreasing the final germinability (Kaydan 

& Yagmur, 2008). The effects of moisture stress at -0.20 

MPa and pH at 5 to 8 were tested on bioassay species 

based on the osmostic potential and pH values of crude 

extracts, respectively. It is found that germination, shoot 

and root growth of the bioassay species were not affected 

by these environmental stresses, implying that moisture 

and pH of extracts do not play a key role for suppressing 

seed germination and growth of the bioassay species. 

 

Effect of P. purpureum extracts on germination and 



radicle growth of bioassay species: The concentration 

of methanolic and aqueous extracts of Pennisetum 



purpureum culm plus leaves and root that gives 50% 

inhibition in germination (GR

50

) of two bioassay species 



is presented in Table 1. Leptochloa chinensis was found 

to be very sensitive to culm plus leaves extracts because 

of low GR

50 


value ranging from 0.06–0.50 g/L. The 

inhibitory effect of methanolic culm plus leaves extracts 

was markedly stronger than that of aqueous culm plus 

leaves extracts on the seed germination of L. chinensis

In the case of root extractL. chinensis was more 

tolerant and aqueous extracts recorded a greater 

allelophatic stress against germination as compared to 

that of methanolic extracts. Similarly, root aqueous 

extract had greater inhibitory effects on Hedyotis 

verticillata  than aqueous extracts of aerial portions. On 

the other hand, roots of both biosassay species were 

more susceptible to root extracts than culm plus leaves 

extracts regardless of any solvent used (Table 2). 

However, the inhibition of radicle growth in the 

bioassay species was greater in aqueous extract as 

compared to methanolic extracts. Both L. chinensis and 

H. verticillata showed great sensitivity to aqueous root 

extract where concentration that gave 50% inhibition of 

radicle growth ranged from 3 to 14 g/L (Table 2).  


POTENTIAL OF NAPIER GRASS EXTRACTS AS A NATURAL HERBICIDE 

 

2097

 

Table 1. GR



50

 values of Hedyotis verticilata and Leptochloa chinensis in relation to crude extracts of P. purpereum.

#

 GR



50

 (g/L) 

Aqueous extracts 

Methanolic extracts 

Plant tissue 

H. verticillata 

L. chinensis 

H. verticillata 

L. chinensis 

Culm plus leaves 

38.50 (7.53) 

0.47 (0.01) 



0.07 (0.01) 

Root 

24.14 (4.34) 



24.28 (2.49) 

50.26 (7.68) 

#

 GR

50 


is the crude extract concentration required to reduce germination by 50%. The values in parentheses are the standard error of the mean 

* GR


50 

cannot be determined because the highest concentration tested has no or weak phytotoxic activity 



 

Table 2. RL

50

 values of Hedyotis verticilata and Leptochloa chinensis in relation to crude extracts of P. purpereum. 

#

 RL



50

 (g/L) 

Aqueous extracts 

Methanolic extracts 

Plant tissue 

H. verticillata 

L. chinensis 

H. verticillata 

L. chinensis 

Culm plus leaves 

38.62(3.80) 

20.61(1.00) 

68.85(4.19) 

Root 


13.36(1.66) 3.94(0.64) 42.30(4.53) 23.45(4.08) 

#

 RL



50 

is the crude extract concentration required to reduce radicle growth by 50%. The values in parentheses are the standard error of the mean 

* RL

50 


cannot be determined because the highest concentration tested has no or weak phytotoxic activity 

 

The relative phytoxicity of plant tissue on seed 



germination and radicle growth vary with bioassay 

species and solvent used for extraction (Tables 1 & 2). 

Alagesaboopathi & Thamilazhagan (2010) reported that 

aqueous leaves and stem extracts of Andrographis lineata 

significantly decreased germination and radicle growth of 

balckgram (Vigna mungo) and greengram (Vigna radiata

greater when compared to root extracts. This may be due 

to the presence of more water soluble compounds in 

plants and the presence of more active substances in 

leaves and stem than root to affect the germination and 

radicle growth (Turk & Tawaha, 2003). However, Marwat 

et al.,  (2008) reported that Parthenium aqueous leaves 

extract application slightly affected the seed germination 

of several weed species such as Cyperus rotundus, 

Echinochloa curus-galli and Xanthium strumariam at the 

same or higher concentrations. Some plants such as 

millet, chickling pea, cotton and alfalfa, have more 

phytotoxic effects in root extracts than in leaf and stem 

extracts (Miri, 2011). Similarly, Okwulehie & Amazu 

(2004) demonstrated that the root aqueous extract of C. 



odorata had the most  inhibitory effect on germination 

and  radicle growth of cowpea and maize than leaves and 

stem extracts. In the present study, the root extract gives 

great reductions in the root elongation of both weed 

species as compared to those of culm plus leaves (Table 

2). However, Ebana et al., (2001) reported that leaves and 

stem of aqueous extracts from rice plants showed greater 

inhibition on root growth of ducksalad than root extract. 

Root growth of rice Basmati Pak variety showed the most 

susceptible response to aqueous fresh sunflower leaf and 

stem extracts than root extracts at higher concentration of 

15% (Bashir et al., 2011). These findings are also 

supported by earlier work of (Ashrafi et al., 2007), who 

investigated the effects of aqueous extracts concentration 

from various Barley plant parts on the radicle length of 7-

d old wild barley seedlings. It is found that more 

inhibition was obtained at a higher extract concentration 

where the degree of phytoxicity of leaves and stem parts 

was stronger than root part.  

Effect of P. purpureum extracts on leaf disc 

discoloration of bioassay species: The concentration of 

methanolic and aqueous extracts of aerial portions and 

roots that retains green color of leaf discs by 50% is 

shown in Table 3.  It is observed that the phytotoxic 

effects of methanolic extracts of culm plus leaves and 

root were species dependent. Hedyotis verticilata was 

found to be more sensitive than Leptochloa chinensis 

when the leaf discs were subjected to the extracts. The 

methanolic culm plus leaves extract was more 

phytotoxic than the methanolic root extract where it 

diminished the green color of H. verticillata leaf disc by 

50% at a concentration as low as 0.06 g/L while L. 



chinensis needed 69.56 g/L extract concentration to 

exhibit the same phytotoxic activity. It is surprise to note 

that aqueous extracts did not exhibit apparent reduction 

of green color of both bioassay species leaf discs 

irrespective of any plant tissues tested.  

It is clear that culm plus leaves extracts appeared to 

give a higher inhibitory effect by reducing the green 

color of leaf discs as compared to that of root extracts 

(Table 3). These results are in agreement with previous 

findings documented by Reinhardt and Bezuidenhout 

(2001) where leaves appear to be the most consistent 

source of chemicals involved in phytotoxicity, while 

fewer and less potent toxins occur in roots. El-Khatib et 

al., (2004) reported that aquoues shoot extracts of 

Chenopodium murale was more severe in its reduction 

on the pigment content of all test species than root 

extracts. According to Reigosa et al., (2006), the 

decrease in chlorophyll pigments is a common response 

of plants to phytotoxin, and this might be a subsequent 

response of plant to these chemicals beside cellular 

damage. Einhellig and Ramussen (1993) stated that 

allelochemicals cause marked reduction in the 

chlorophyll content of the test plants through their 

effect on biosynthesis and denaturation of chlorophyll 

molecules. 


NORHAFIZAH MD ZAIN ET AL., 

2098 

 

Table 3. DS



50

 values of Hedyotis verticilata and Leptochloa chinensis in relation to crude extracts of P. purpereum. 

#

 DS



50

  (g/L) 

Aqueous extracts 

Methanolic extracts 

Plant tissue 

H. verticillata 

L.chinensis 

H. verticillata 

L.chinensis 

Culm plus leaves 



* * 

0.06(0.01) 69.56(8.00) 

Root 

* * 

0.16(0.01) 84.82(9.89) 

#

 DS


50 

is the crude extract concentration required to reduce green color retention of leaf disc by 50%. The values in parentheses are 

the standard error of the mean 

* DS


50 

cannot be determined because the highest concentration tested has no or weak phytotoxic activity 



 

Table 4. Effects of P. purpureum extracts on fresh weight of bioassay species. 

Aqueous extracts 

Methanolic extracts 

H. verticillata 

L. chinensis 

H. verticillata 

L. chinensis 

Plant tissue 

Extract 

concentration 

(g/L) 

Fresh weight (% of control) 

Culm plus leaves 

50 

149 ± 4 c 



338 ± 15 a 

121 ± 5 a 

83 ± 5 b 

 

100 



121 ± 5 b 

455 ± 14 b 

120 ± 4 a 

66 ± 5 a 

 

150 


95 ± 3 a 

466 ± 9 b 

104 ± 15 a 

82 ± 5 b 

Root 

50 


93 ± 7 c 

103 ± 4 b 

105 ± 4 b 

116 ± 1 c 

 

100 


73 ± 9 b 

93 ± 3 a 

100 ± 2 ab 

110 ± 1 b 

 

150 


39 ± 8 a 

90 ± 1 a 

97 ± 2 a 

96 ± 2 a 

Mean within the same column of each plant tissue followed by similar letter has no significant difference at p<0.05 as determined by Tukey test 

 

Effects of P. purpureum extracts on fresh weight of 



bioassay species: The effects of methanolic and aqueous 

extracts on the fresh weight of bioassay species are shown 

in Table 4. Changes of seedling fresh weight varied with 

plant tissue extract, concentration and bioassay species. 

Fresh weight of Hedyotis verticillata was greatly reduced 

when concentration of aqueous root extract increased. 

Fresh weight of H. verticillata was decreased by 61% at 

150 g/L concentration of aqueous root extracts but no 

inhibitory activity was exerted by methanolic root extracts 

at the same concentration. However, there was slight 

inhibition or stimulation on seedling growth of 

Leptochloa chinensis when being subjected to the 

aqueous or methanolic root extracts. It is interesting to 

note that sensitivity of L. chinensis to culm plus leaves 

extracts were solvent dependent. High stimulatory effect 

on seedling growth of L. chinensis was found when being 

treated with aqueous extracts. In contrast, growth of L. 



chinensis subjected to methanolic extracts was greatly 

inhibited. Surprisingly, growth of H. verticillata was 

stimulated and slight inhibited when being subjected to 

culm plus leaves extracts. These results, however, are not 

in accordance with Shahrokhi et al., (2011), who found 

that the aqueous leaf and stem extracts of pigweed was 

more allelopathic on wheat seedling growth than root 

extract at the highest concentration. 

Roots of L. chinensis are very susceptible to aqueous 

root and culm plus leaves extracts in filter paper under 

laboratory conditions (Table 2). Surprisingly, the seedling 

fresh weight of L. chinensis was increased by 

approximately 470% in soil even after treated with 

aqueous culm plus leaves extracts at a concentration as 

high as 150 g/L. In contrast, susceptibility of H. 

verticilata to aqueous root extracts in the filter paper was 

also exhibited in the soil where the seedling fresh weight 

was reduced by 61% when subjected to the same extracts 

at 150 g/L (Table 4). These results imply that phytotoxic 

compounds of aqueous root and culm plus leaves extract 

from  Pennisetum purpureum may have interacted with 

organic compounds or microbes in the soil, thereby 

resulting in stimulatory or inhibitory effects and this 

response varies with biosasay species. The results of 

present study are in accordance with findings of Javaid et 



al., (2010) who found that the effect of Alstonia scholaris 

(L.) R. Br. leaf extract on root length of Parthenium 



hysterophorus L. was evident where the low 

concentration of 0.4g/L extracts application greatly 

declined the root elongation. However, the phytotoxic 

effect of the leaf extract on seedling fresh weight of P. 



hysterophorus was highly reduced even at a high 

concentration of 500g/L in soil.  

 

Effects of P. purpureum extracts on shoot height of 

bioassay species: The effects of methanolic and aqueous 

extracts on shoot height of two bioassay species are 

presented in Table 5. Shoot height of Hedyotis verticillata 

was slightly reduced when concentration of aqueous root 

extract increased. Shoot height of H. verticillata was 

decreased by 20% at 150 g/L concentration of aqueous 

root extracts but less inhibition was provided by 

methanolic root extracts at the same concentration (Table 

5). Similarly, aqueous root extracts had  less inhibitory 

effect on shoot growth of Leptochloa chinensis regardless 

of any extract concentration.  Similar trend was also 

observed in methanolic root extracts except at a 

concentration of 50 g/L which gave stimulatory effect. It 


POTENTIAL OF NAPIER GRASS EXTRACTS AS A NATURAL HERBICIDE 

 

2099

is apparent that sensitivity of both bioassay species to 

culm plus leaves extracts was solvent dependent. H. 

verticillata and L. chinensis displayed slight inhibition or 

stimulation when being treated with methanolic culm plus 

leaves extracts. However, both bioassay species only 

registered stimulation when subjected to aqueous culm 

plus leaves extract, with L. chinensis being highly 

stimulated. 

The results has shown that there was slight detectable 

impact on the shoot height of weed species when extract 

concentration increased (Table 5). In a new study 

conducted by Mehmood et al., (2011), it was shown that 

aqueous extracts of bark of Syzygium cumini at a 

concentration ranging from 50 to 200 g/L exhibited an 

erratic pattern of increase in shoot growth of Parthenium 

hysterophorus. These less herbicidal effects on shoot 

height are likely to emerge because of different response 

and sensitivity of allelochemicals on plant growth or 

influenced by mechanism (mode of action) of allelopathic 

activity. Caton et al., (1999) have documented that 

residues, exudates and leachates of many plant or weeds 

can affect the growth of the other plants with a wide range 

of injurious effect where the plant parts are not equally 

susceptible to allelochemical.  

 

Table 5. Effects of P. purpureum extracts on shoot height of bioassay species. 



Aqueous extracts 

Methanolic extracts 

H. verticillata 

L. chinensis 

H. verticillata 

L. chinensis 

Plant tissue 

Extract 

concentration 

(g/L) 

Shoot height (% of control) 

Culm plus leaves 

50 

117 ± 7 a 



170 ± 3 a 

101 ± 2 b 

90 ± 9 a 

 

100 



118 ± 6 a 

201 ± 2 b 

94 ± 4 a 

90 ± 1 a 

 

150 


111 ± 5 a 

205 ± 3 b 

93 ± 0 a 

105 ± 7 b 

Root 

50 


109 ± 10 b 

96 ± 1 a 

111 ± 2 c 

108 ± 3 b 

 

100 


91 ± 4 a 

95 ± 4 a 

103 ± 4 b 

98 ± 4 a 

 

150 


80 ± 2 a 

95 ± 3 a 

95 ± 3 a 

95 ± 3 a 

Mean within the same column of each plant tissue followed by similar letter has no significant difference at p<0.05 as determined by Tukey test 

 

Conclusions 



 

Based on the results of this study, it can be concluded 

that the culm plus leaves extracts of P. purpureum posses 

greater herbicidal activity than the root extracts. The 

varying degree of inhibition on germination and radicle 

growth and reduction in green color retention of leaf disc 

highlights its selective herbicidal activity in H. verticillata 

and  L. chinensis. On the other hand, culm plus leaves 

extracts had more allelopathic effect (either negative or 

positive) than did the root extracts on the seedling growth 

of bioassay species. P. purpureum is plant with proven 

herbicidal potential, which requires more studies related to 

the effects of their allelochemicals to other weed plants. 

Further study on isolation and identification of 

allelochemicals or compounds from culm plus leaves 

extracts could provide means to maximize their inhibitory 

effects for the development of natural herbicides. 

 

Acknowledgement 

 

This research was funded by Fundamental Research 



Grant Scheme (FRGS), Ministry of Higher Education 

(MOHE), Malaysia. 



 

References 

 

Alagesaboopathi, C. and S. Thamilazhagan. 2010. Allelopathic 



potential of Andrographis lineate Nees on germination and 

seedling growth of blackgram and greengram. Crop. Res, 

40: 182-185.  

Anonymous. 2005. Florida’s Exotic Pest Plant Council. List of 

Invasive Species. http://www.fleppc.org/list/list05web.pdf. 

Accessed: September 16, 2011. 

Ashrafi, Z.Y., S. Sadeghi and H.R. Mashhadi. 2007. 

Allelopathic effects of barley (Hordeum vulgare) on 

germination and growth of wild barley (H. spontaneum). 

Pak J. Weed Sci. Res., 13(1-2): 99-112. 

Bashir, U., A.  Javaid and R. Bajwa. 2011. Comparative tolerance 

of different rice varieties to sunflower phytotoxicity. J. Med. 

Plants Res., 5(26): 6243-6248. 

Batish, D.R., K. Lavanya. H.P. Singh and P.K. Kohli. 2007b. 

Phenolic allelochemicals released by Chenopodium murale 

affect growth, nodulation and macromolecule content in 

chickpea and pea. Plant Growth Regul., 51(2): 119-128. 

Caton, B.P., A.M. Mortimer, T.C. Hill, J.E. Gibson and A.J. 

Fisher. 1999. Weed morphology effects on competitiveness 

for light in direct-seeded rice. Proc. 17th Asian-Pacific, 



Weed Sci., Soc. Conf., Bangkok, 1.A: 116-120. 

Chon, S.U. and J.D. Kim. 2002. Biological activity and 

quantification of suspected allelochemicals from alfalfa 

plant parts. J. Agr. Crop Sci., 188: 281-285. 

Ebana, K., W. Yan, H. Robert, Dilday, H. Namai and K. Okuno. 

2001. Variation in the allelopathic effect of rice with water 

soluble extracts.  Agron. J., 93: 16-20. 

Einhellig, F.A. and J.A. Ramussen. 1993. Effect of root exudate 

sorgoleone on photosynthesis. J. Chem. Ecol., 19: 369-375. 

El-Khatib, A.A., A.K. Hegazy and H.K. Galal. 2004. Does 

allelopathy have a role in the ecology of Chenopodium 

muraleAnn. Bot. Feninci., 41: 37-45. 

Hanna, W.W., C.J. Chaparro, B.W. Mathews, J.C. Burns and L.E. 

Sollenberger. 2004. Perennial Pennisetums. In: Warm-

Season (C4) Grasses. (Eds.): L.E. Moser, B.L. Burson and 

L.E. Sollenberger. American Society of Agronomy, 

Monograph Series no. 45, Madison, pp. 503-535. 

Hanna, W.W., S.K. Gupta and I.S. Khairwal. 1999. Breeding for 



Forage. Oxford and IBH Publishing, New Delhi, India, pp. 

304-316. 

Javaid, A., S. Shafique, R. Bajwa and S. Shafique. 2010. 

Parthenium management through aqueous extracts of 



Alstonia scholarisPak. J. Bot., 42(5): 3651-3657. 

Kaydan, D. and M. Yagmur. 2008. Germination, seedling 

growth and relative water content of shoot in different seed 

sizes of triticale under osmotic stress of water and NaCl. 



Afr. J. Biotechnol., 7(16): 2862-2868. 

Khan, Z.R., C.A.O. Midega, N.J. Hutter, R.M. Wilkins and L.J. 

Wadhams. 2006. Assessment of the potential of Napier 

grass (Pennisetum purpureum) varieties as trap plants for 



NORHAFIZAH MD ZAIN ET AL., 

2100 

management of Chilo partellusEntomol. Exp. Appl., 119: 

15-22. 

Kuk, Y.N., O.D. Kwon, H. Jung, N.R. Burgos and G. Jaock. 



2002. Cross-resistance pattern and alternative herbicides 

for  Rotala indica resistant to imazosulfuron in Korea. 



Pestic. Biochem. Physiol., 74(3): 129-138. 

Ma, L., H. Wu, R. Bai, L. Zhou, X. Yuan and D. Hou. 2011. 

Phytotoxic effects of Stellera chamaejasme L. root extract. 

Afr. J. Agric. Res., 6: 1170-1176. 

Mannetje, L. and R.M. Jones. 1992. Plant Resources of South-



East Asia. (4

th

 Ed) Pudoc Scientific Publishers, 



Wageningen, Netherlands, pp. 191-192. 

Marwat, K.B, M.A. Khan, A. Nawaz and A. Amin. 2008. 



Parthenium hysterophorus L. A potential source of 

bioherbicide. Pak. J. Bot., 40(5): 1933-1942. 

Mehmood, K., H.M. Asif, R. Bajwa, S. Shafique and S. 

Shafique. 2011. Phytotoxic potential of bark extracts of 



Acacia nilotica and Syzygium cumini against Parthenium 

hysterophorusPak. J. Bot., 43: 3007-3012. 

Michel, B.E. 1983. Evaluation of the water potentials of 

solutions of polyethylene glycol  8000 both in the absence 

and presence of other solutes. Plant Physiol., 72: 66-70.  

Miri, R. 2011. Allelopathic potential of various plant species on 

Hordeum Spontaneum.  Adv. Environ. Biol., 5(11): 3543-

3549. 


Narwal, S.S. 1994. Allelopathy in crop production. Indian 

Scientific Publishers, Jodhpur, Rajasthan, India. 

Okwulehie, I.C. and O.M. Amazu. 2004. Possible allelophatic 

effects of Siam weed (Chromolaena odorata) (L) King, R. 

M. and Robinson) extracts on the germination and seedling 

growth of cowpea (Vigna unguiculata L.) and maize (Zea 



mays L.). Niger Agric. J., 35: 59-67. 

Reddy, K.N. and M. Singh. 1992. Germination and emergence of 

hairy beggarticks (Bidens pilosa). Weed Sci., 40: 195-199. 

Reigosa, M.J. and E. Pazos-Malvido. 2007. Phytotoxic effects of 

21 plant secondary metabolites on Arabidopsis thaliana 

germination and root growth. J. Chem. Ecol., 33: 1456-1466. 

Reinhardt, C.F. and S.R. Bezuidenhout. 2001. Growth stage of 

Cyperus esculentus influences its allelopathic effect on 

ectomycorrhizal and higher plant species. In: Allelopathy in 



Agroecosystems, (Eds.): R.K. Kohli, H.P. Singh and D.R. 

Batish. Food Products Press, Binghamton, pp. 323-333. 

Saeed, M., H. Khan, M. Khan, S. Simjee, N. Muhammad and S. 

Khan. 2010. Phytotoxic, insecticidal and leishmanicidal 

activities of aerial parts of Polygonatum verticillatum.  Afr. 

J. Biotechnol., 9: 1241-1244. 

Shahrokhi, S., M. Darvishzadeh, M. Mehrpouyan, M. Farboodi 

and M. Akbarzadeh. 2011. Germination and Growth of 

Wheat,  Triticum aestivum (cv. Azar2) in Response to 

Pigweed,  Amaranthus retroflexus L. Organs Extracts. 2nd 

International Conference on Agricultural and Animal 

Science, IPCBEE vol.22, IACSIT Press, Singapore. 

Soyler, D., E. Canıhoş, N. Temel and M. Hajyzadeh. 2012. 

Determination of chemical fungicide against soil borne 

fungal diseases of capers (Capparis ovata Desf. var. 

herbacea) during early stages. Pak. J. Agri. Sci., 49: 345-

348. 


Turk, M.A. and A.M. Tawaha. 2003. Allelopathic effect of black 

mustard (Brassica nigra L.) on germination and growth of 

wild oat (Avena fatua L.). Crop Prot., 22: 673-677. 

 

(Received for publication 3 March 2012) 




Verilənlər bazası müəlliflik hüququ ilə müdafiə olunur ©azkurs.org 2016
rəhbərliyinə müraciət

    Ana səhifə