T. C. Sağlik bakanliği okmeydani e



Yüklə 0,72 Mb.
Pdf görüntüsü
səhifə7/8
tarix03.02.2017
ölçüsü0,72 Mb.
#7545
1   2   3   4   5   6   7   8

ÖZET 

 

       



       Bu  çalışma  1  Şubat  2007  -  1  Ağustos  2007  tarihleri  arasındaki  6  aylık  dönemde 

Sağlık  Bakanlığı  Okmeydanı  Eğitim  ve  Araştırma  Hastanesi  Reanimasyon,  Genel 

Cerrahi Yoğun Bakım (GCYB), Beyin Cerrahi Yoğun Bakım (BCYB), Dahiliye, Genel 

Cerrahi  ünitelerinde  yatan  hastalarda  katetere  bağlı  infeksiyon  (KB )  ve  kateter 

kolonizasyon sıklığını, risk faktörlerini, etken mikroorganizmaları ve periferik ven ile 

santral venöz kateterden (SVK) alınan kan kültürlerinin üreme zaman farkının tanıdaki 

yerini belirlemek amacıyla yapıldı. 

       Çalışmamıza  dahil  edilen  100  vakada  37  (%37)  kateter  steril,  9  (%9)  kateter 

kontamine  iken  39  (%39)  kateter  kolonizasyonu,  10  (%10)  katetere  bağlı  kan  akımı 

infeksiyonu (KBKA )  ve 5 (%5) lokal kateter infeksiyonu (LK ) saptandı.        

       Yaş, cinsiyet ve hastaların altta yatan hastalıkları ile KB  ve kateter kolonizasyonu 

arasında istatistiksel olarak anlamlı bir ilişki saptanmadı (p>0.05). 

       Subklavian  vene  takılan  32  (%45.7),  Juguler  vene  takılan  19  (%76)  ve    femoral 

vene  takılan  3  (%60)  kateterde  üreme  saptandı.  Juguler  vene  takılan  kateterlerde 

saptanan  üreme  sıklığının  subklavian  vene  takılan  kateterlere  göre  yüksek  olması 

istatistiksel açıdan anlamlı saptandı (p=0.03). 

         Total parenteral nütrisyon (TPN) kullanan vakalarda KB  ve kateter kolonizasyon 

oranı  TPN  kullanmayan  hastalara  göre  daha  sıktı  (p=0.003).    Kateter  ucundan  maya 

üreyen  5  vakanın  3 (%60)’ünde  TPN  kullanımı vardı.  Kan  ürünü  kullanan  hastalarda 

KB  oranı kullanmayan hastalara oranla  daha sıktı (p=0.025).   

        Opere edilmiş olan vakalarda cerrahi yara tipleri ile KB  ve kolonizasyon  arasında 

ilişki saptanmadı (p>0.05).  

       Kateterlerin  takıldığı  ünite  ve  kateterlerin  elektif/acil  olarak  takılma  durumuyla 

KB  arasında ilişki saptanmadı (p>0.05). 

       Kateteri  10  günden  daha  kısa  süre  takılı  bulunan  hastaların  2  (%5.7)’sinde  KB  

saptanırken  kateteri  10  gün  ve  daha  uzun  süre  takılı  kalan  vakalarda  13  (%20)  KB  

saptandı  (p=0.004).  Kateterin  takılı  kaldığı  süre  uzadıkça  KB   riskinde  artış  olduğu 

gözlendi. 



 

67 


       Çalışmamızda 54 (%54) kateterden 54 etken üredi. Bunlardan 32 (%59.2) kateterde 

Gram-pozitif kok, 17 (%31.5) kateterde Gram-negatif çomak, 5 (%9.3) kateterde maya 

üredi. En sık üreyen etkenler sırası ile metisiline dirençli S. aureus (MRSA), metisiline 

dirençli  koagülaz  negatif  stafiolokok  (MRKNS),  Pseudomonas  spp.,  K.pneumoniae 

spp.,  Candida  spp.  olarak  belirlendi.  KB ’ye  neden  olan  etkenler  arasında  6  (%40) 

Gram-pozitif kok, 6 (%40) Gram-negatif çomak, 3 (%20) maya saptandı. KB 'ye en sık 

neden olan etkenler sırası ile MRSA, Candida spp., K.pneumoniae spp., Pseudomonas 

spp., MRKNS olarak belirlendi. 

        Exitus  olan  vakalar  değerlendirildiğinde  KB   ile  KB   olmayan  vakalar  arasında 

anlamlı fark saptanmadı (p>0.05). 

        APACHE (Acute Physiology and Chronic Health Evaluation) II skoru (p=0.019) 

ve  prediktif  mortalite  oranlarının  (p=0.023)  KB   olan  vakalarda  daha  yüksek 

saptanması istatistiksel açıdan anlamlı bulundu.       

        SVK  ve  perifer  venden  alınan  eş  zamanlı  kan  kültürlerinin  üreme  zamanlarının 

karşılaştırılmasına dayanan pozitif zaman farkı KBKA  tanısı için  %93 özgüllük, %90 

duyarlılık ile saptandı. 

        Hastaneler  arası  karşılaştırma  yapabilmek  için,  kateter  kullanım  gününe  göre 

belirlenmiş kateter ilişkili hızların kullanılması benimsendi. Hastanemizin ünitelere göre 

SVK  infeksiyon  hızları  1000  kateter  günü  başına  yoğun  bakım  ünitelerinde  8.4  ve 

yoğun  bakım  dışı  ünitelerde  4.1 olarak  saptandı.  Tüm  ünitelerde  6.9 olarak  belirlendi. 

Üniteler bazında  BCYB’de 8.8, GCYB’de 5.5, Reanimasyon’da 9.1, Dahiliye’de 2.6, 

Genel Cerrahi’de 9.3 olarak belirlendi. 

        Çalışmamızda  sonuç  olarak  APACHE  II  skoru  ve  prediktif  mortalite  oranı, 

kateterin  10  günden  uzun  süre  takılı  kalması,  TPN  ve  kan  ürünü  kullanımı,  kateterin 

takılı  olduğu  ven  risk  faktörleri  olarak  belirlendi.  nfeksiyon  kontrol  politikaları  ile 

geliştirilen  kontrol  önlemleri  sayesinde  risk  faktörlerinin  önemli  ölçüde  önlenebilir 

olması katetere bağlı infeksiyon hızlarında önemli bir oranda azalma sağlayabilecektir. 

 

 



 

 

 



 

68 


SUMMARY 

 

       The present  study has  been  carried out during the 6-month period between  February 1st, 



2007  and  August  1st  2007  on  patients  hospitalized  in  Neurosurgery  Intensive  Care  Unit 

(NICU),  General  Surgery  ICU;  General  Surgery,  Internal  Medicine,  and  Reanimation 

Departments  of  Okmeydani  Teaching  and  Research  Hospital  of  Health  Ministry  in  order  to 

determine  roles  of  catheter-related  infection  (CRI)  and  catheter  colonization,  risk  factors, 

causative  microorganisms,  and  differences  in  growth  rate  exhibited  by  blood  drawn  from 

periperal vein and central venous catheter (CVC).  

       Among 100 cases included in the present study, while 37 (37%) catheters were sterile, 9 

(9%)  were  contaminated,  39  (39%)  had  catheter  colonization,  10  (10%)  had  catheter-related 

bloodstream infection (CRBSI), and 5 had local catheter-related infection (LCRI).  

       No  statistically  significant  difference  was  determined  between  age,  gender,  underlying 

diseases, catheter-related infection (CRI) and catheter colonization (p>0.05).    

       Growth  was  determined  in  32  (45.7%)  catheters  placed  in  subclavian  vein,  19  (76%) 

catheters  placed  in  jugular  vein,  and  3  (60%)  catheters  placed  in  femoral  vein.  The  higher 

incidence of growth in catheters placed in jugular vein, was found to be statistically significant, 

compared to those of subclavian vein (p=0.03).  

       CRI  and  catheter  colonization  rates  of  cases  receiving  total  parenteral  nutrition  (TPN), 

were more higher than non-TPN patients (p=0.003). TPN usage was found to be present in 3 

(60%)  of  5  cases  exhibiting  yeast  growth  on  catheter  tip.  CRI  rate  of  patients  using  blood 

products was higher than patients who do not use (p=0.025).  

       No association was found between operated cases in terms of surgical lesion types and CRI 

- colonization (p>0.05). 

       No relation was determined between catheter receiving unit, elective/urgent placement of 

catheters and CRI (p>0.05). 

       While  2  (5.7%)  of  the  patients  who  had  a  placed  catheter  stayed  for  more  than  10  days, 

revealed  CRI;  13  (20%)  CRI  cases  were  determined  in  patients  who  had  a  placed  catheter 

stayed ≥ 10 days (p=0.004). As the duration of catheter stay increased, CRI risk was observed 

to be elevated.     

       In  the  present  study,  54  microorganism  growth  were  observed  in  54  (54%)  catheters. 

Among those, while 32 (59.2%) catheters exhibited Gram-positive cocci, 17 (31.5%) catheters 

revealed Gram-negative bacilli, and 5 (9.3%) catheters manifested yeast growth. Most common 

agents  showing  growth  were  methicillin-resistant  S.  Aureus  (MRSA),  methicillin-resistant 

coagulase  negative  staphylococcus  (MRCNS),  Pseudomonas  spp.,  K  pneumoniae  spp.,  and 



 

69 


candida  spp.,  respectively.  CRI  causing  microorganisms  were  observed  to  be  6  (40%)  Gram-

positive  cocci,  3  (20%)  Gram-negative    bacilli,  and  3  (20%)  yeast.  The  most  common  causes 

leading  to  CRI  were  MRSA,  Candida  spp.,  K.  Pneumoniae  spp.,  Pseudomonas  spp.,  and 

MRCNS, respectively.  

       The evaluation of exitus cases revealed no significant difference between CRI and non-CRI 

cases (p>0.05). 

       The  assessment  of  APACHE  (Acute  Physiology  and  Chronic  Health  Evaluation)  II  score 

(p=0.019)  and predictive mortality rates (p=0.023)  were revealed  statistically  significant to be 

high in CRI. 

       CRBSI  diagnosis  based  on  differential  time  to  positivity  including  comparison  of  the 

growth rates of blood cultures sampled simultaneously from peripheral vein and CVC, revealed 

a specificity of 93% and a sensitivity of 90%.  

       In order to make a comparison between hospitals, catheter-related rates determined 

according to catheter usage day, were decided to be used. In our hospital, while CVC 

infection rate in ICUs was 8.4/1000 catheter day, it was 4.1/1000 catheter day for the 

remaining  units.  Overall  rate  was  6.9.  Distribution  over  units  was  as  follows:          

NICU = 8.8, General Surgery ICU = 5.5, Reanimation = 9.1, Internal Medicine = 2.6, 

and General Surgery = 9.3. 

 

       In  the  present  study,  APACHE  II  score,  predictive  mortality  rate,  catheter  stays 



longer than 10 days, usage of TPN and blood product, and the vein catheter placed in, 

were found to be the risk factors. Preventable nature of risk factors due to the help of 

precautions  developed  by  infection  control  policies,  might  cause  a  considerable 

decrease in CRI rates.   

 

 

 



 

 

 



 

 

 



 

 

70 


KAYNAKLAR 

 

1.



  Henderson  DK.  Infections  caused  by  percutaneous  intravascular  devices.  In: 

Mandeli  GL,  Bennett  JE,  Dolin  R  (eds).  Principles  and  Practice  of  Infectious 

Diseases. 6th ed. Philadelphia: Churchill-Livingstone Ine 2005:3347-62. 

2.

  O'Grady NP, Alexander M, Dellinger EP, Gerberding JL, Heard SO, Maki DG, 



Masur  H,  McCormick  RD,  Mermel  LA,  Pearson  ML,  Raad  II,  Randolph  A, 

Weinstein  RA.  Guidelines  for  the  prevention  of  intravascular  catheter-related 

infections. MMWR Recomm Rep 2002 Aug 9;51(RR-10):1-29. 

3.

  Seifert H, Jansen B, Widmer AF, Farr BM. Central-Venous Catheters. In: Seifert 



H,  Jansen  B,  Farr  BM  (eds).  Catheter-Related  Infections.  2th  ed.  New  York: 

Marcel Dekker. 2005: 293-326. 

4.

  Polderman  KH,  Girbes  ARJ.  Central  venous  catheter  use.  Part  1.  Mechanical 



complications. Intensive Care Med 2002;28:1-17. 

5.

  Polderman  KH,  Girbes  ARJ.  Central  venous  catheter  use.  Part  2.  Infectious 



complications. Intensive Care Med 2002;28:18-28. 

6.

  Mermel LA, Farr BM, Sherertz RJ, Raad II, O'Grady N, Harrris JS, Craven DE. 



Guidelines  for  the  management  of  intravascular  catheter-related  infections.  Clin 

Infect Dis 2001;32:1249-72. 

7.

  Afif C, Raad II. Intravascular catheter-related infections. In: Schlossberg D (ed). 



Current Therapy of Infectious Disease. 2nd ed. St. Louis: Mosby, 2001:416-8. 

8.

  Siegman-Igra Y, Golan H, Schwartz D, et al. Epidemiology of vascular catheter-



related  bloodstream  infections  in  a  large  university  hospital  in  Israel.  Scand  J 

Infect Dis 2000;32:411-15. 

9.

  Jordan  JH,  Stolz  SM.  Culture  of  intravascular  devices.  In:  Isenberg  HD  (ed). 



Microbiology  Procedures  Handbook.  Washington  DC:  American  Society  for 

Microbiology, 1992:11.7.1-11.7.7. 

10.

  Öztürk  R.  Damar  içi  kateterlere  bağlı  infeksiyonlar  ve  korunma.  Hastane 



nfeksiyonları.  Hastane  infeksiyonları  derneği  yayını  No:1.  Ankara,  bilimsel  tıp 

yayınevi; 2003: 489-517. 



 

71 


11.

  Hammarskjöld F, Wallen G, Malmvall BE. Central venous catheter infections at a 

county  hospital  in  Sweden:  a  prospective  analysis  of  colonization,  incidence  of 

infection and risk factors. Acta Anaesthesiol Scand 2006; 50: 451-460. 

12.

  Gristina  AG.  Biomaterial-centered  infection:  microbial  adhesion  versus  tissue 



integration. Science 1987;237:1588-95. 

13.


  Gray  ED,  Peters  G,  Verstegen  M,  et  al.  Effect  of  extracellular  slime  substance 

from Staphylococcus epidermidis on the human cellular immun response. Lancet 

1984;1:365-7. 

14.


  Raad  II,  Luna  M,  Khalil  SA,  et  al.  The  relationship  between  thrombotic  and 

infectious complications of central venous catheters. JAMA 1994;271:1014-6. 

15.

  Uncu  H,  Turunç  T,  Torun  D,  Demiroğlu  YZ,  Arslan  H.  Aeromonas 



hydrophila’nın  neden  olduğu  katetere  bağlı  bir  bakteremi:  Olgu  sunumu.  Flora 

2004;9(2):150-53. 

16.

  Eggimann  P,  Pittet  D.  Overview  of  catheter-related  infections  with  special 



emphasis  on  prevention  based  on  educational  programs.  Clin  Microbiol  Infect 

2002;8:295-309. 

17.

  Swanson  DS.  Central  venous  catheter-related  infections  due  to  nontuberculous 



Mycobacterium species. Pediatr Infect Dis J 1998;17:1163-4. 

18.


  Raad II, Vartivarian S, Khan A, Bodey GP. Catheter-related infections caused by 

the Mycobacterium fortuitum complex: Fifteen cases and review. Rev Infect Dis 

1991;13:1120-5. 

19.


  Centers  for  Disease  Control  and  Prevention.  National  Nosocomial  Infections 

Surveillance (NNIS). System report, data summary from January 1990-May 1999, 

issued June 1999. Am J Infect Control 1999;27:520-32. 

20.


  Schaberg DR, Culver DH, Gaynes RP. Major trends in the microbial etiology of 

nosocomial infection. Am J Med 1991;91:72-5. 

21.

  Yücesoy  M,  Ergun  MC,  Ören  H,  Gülay  Z.  Olgu  raporu:  Fusarium  fungemisi. 



Mikrobiyoloji bülteni 2004;38(3);265-71. 

22.


  Mckinley  S,  Mackenzie  A,  Finfer  S,  et  al.  Incidence  and  predictors  of  central 

venous catheter related infection in intensive care patients. Anaesth Intensive Care 

1999;27:164-9. 


 

72 


23.

  Crump JA, Collignon PJ. Intravasculer associated infections. Eur J Clin Microbiol 

Infect Dis 2000;19:1-8. 

24.


  Bjornson  HS,  Colley  R,  Bower  RH,  et  al.  Association  between  microorganism 

growth  at  the  catheter  insertion  site  and  colonization  of  the  catheter  in  patients 

receiving total parenteral nutrition. Surgery 1982;92:720-7.   

25.


  Bouza E, Alvarado N, Alcala L, Perez MJ, Rincon C, Munoz P. A randomized and 

prospective  study  of  3  procedures  for  the  diagnosis  of  catheter-related 

bloodstream infection without catheter withdrawal. Clini Infect Dis 2007; 44:820–

6. 


26.

  Haslett  TM,  Isenberg  HD,  Hilton  E,  et  al.  Microbiology  of  indwelling  central 

intravascular catheters. J Clin Microbiol 1988;26:696-701. 

27.


  Greene  JN.  Catheter-related  complications  of  cancer  therapy.  Infect  Dis  Clin 

North Am 1996;10:255-95. 

28.

  Pearson  ML.  Guideline for  prevention  of intravascular device-related infections. 



Part  I.  Intravascular  device-related  infections:  An  overview.  The  Hospital 

lnfection  Control  Practices  Advisory  Committee.  Am  J  Infect  Control 

1996;24:262-77. 

29.


  Raad  II,  Bodey  GP.  Infectious  complications  of  indwelling  vascular  catheters. 

Clin Infect Dis 1992;15:197-208. 

30.

  Sherertz RJ. Pathogenesis of vascular catheter infections. In: Jansen B, Farr BM, 



Seifert  H  (eds).  Catheter-Related  Infections.  2th  ed.  New  York:  Marcel  Dekker. 

2005: 23-36. 

31.

  Goldmann  DA,  Pier  GB.  Pathogenesis  of  infections  related  to  intravascular 



catheterization. Clin Microbiol Rev 1993;6:176-92. 

32.


  Linares J, Sitges-Serra A, Garau J, Perez JL, Martin R. Pathogenesis of catheter 

sepsis:  A  prospective  study  with  quantitative  and  semiquantitative  cultures  of 

catheter hub and segments. J Clin Microbiol 1985;21:357-60. 

33.


  Raad I. Intravascular-catheter-related infections. The Lancet 1998;351 :893-8. 

34.


  Davenport DS, Massanari RM, Pfaller MA, Bale MJ, Streed SA, Hierholzer WJ. 

Usefulness  of  a  test  for  slime  production  as  a  marker  for  clinically  significant 

infections with coagulase-negative staphylococci. J Infect Dis 1986;153:332-9. 


 

73 


35.

  Younger  J,  Christensen  GO,  Bartley  OL,  Simmons  JC,  Barrett  FF.  Coagulase-

negative  staphylococci  isolated  from  cerebrospinal  fluid  shunts:  Importance  of 

slime production, species identification, and shunt removal to clinical outcome. J 

Infect Dis 1987;156:548-54. 

36.


  Safdar  N,  Maki  DG.  The  pathogenesis  of  catheter-related  bloodstream  infection 

with  noncuffed  short-term  central  venous  catheters.  ntensive  care  med 

2004;30:62-67. 

37.


  Widmer  AF. Intravenous-related  infections.  In: Wenzel  RP  (ed).  Prevention and 

Control of Nosocomial lnfections. Baltimore: Williams & Wilkins, 1997:771-805. 

38.

  Cunha BA. Intravenous line infections. Critical Care Clinics 1998;14:339-46. 



39.

  Hampton  AA,  Sherertz  RJ.  Vascular-access  infections  in  hospitalized  patients. 

Surg Clin North Am 1988;68:57-71. 

40.


  Reimer  LG.  Catheter-related  infections  and  blood  cultures.  Clin  Lab  Med 

1994;14:51-8. 

41.

  Cercenado E, Ena J, Rodriguez-Creixems M, Romero I, Bouza E. A conservative 



procedure  for  the  diagnosis  of  catheter-related  infections.  Arch  Intem  Med 

1990;150:1417-20. 

42.

  Görenek  L.  Nozokomiyal  Damar  çi  Kateterlere  Bağlı  nfeksiyonlar.  GATA 



Hastane  nfeksiyon Kontrol Komitesi Yayınları 2006, 165-90. 

43.


  Bradley SF, Kaufman CA. Infections associated with vascular catheters. In: Rippe 

JM,  Irwin  RS,  Fink  MP,  Cera  FB  (eds).  Intensive  Care  Med.  3rd  ed.  Boston: 

Little, Brown and Company, 1996:1141-52. 

44.


  Ulusoy S, Akan H, Arat M, Baskan S, Bavbek S, Çakar N, Çetinkaya Şardan Y, 

Somer  A,  Şimşek  Yavuz  S.  Damar  çi  Kateter  nfeksiyonlarının  Önlenmesi 

Kılavuzu. Yoğun Bakım Derneği Dergisi 2006, Ek: 1, Cilt: 4. 

45.


  Cooper  GL,  Hopkins  CC.  Rapid  diagnosis  of  intravascular  catheter-associated 

infection  by  direct  Gram  staining  of  catheter  segments.  N  Engl  J  Med 

1985;312:1142-7. 

46.


  Maki  DG,  Weise  CE,  Sarafin  HW.  A  semiquantitative  culture  method  for 

identifying intravenous-catheter-related infection. N Engl J Med 1977;296:1305-

9. 


 

74 


47.

  Zufferey  J,  Rime  B,  Francioli  P,  Bille  J.  Simple  method  for  rapid  diagnosis  of 

catheter-associated infection by direct acridine orange staining of catheter tips. J 

Clin Microbiol 1988;26:175-7. 

48.

  Haznedaroğlu  T.  Kateter  nfeksiyonları.  GATA  Hastane  nfeksiyon  Kontrol 



Komitesi Yayınları. 2005, 145-182. 

49.


  Sherertz  RJ,  Raad  II,  Belani  A,  Koo  LC,  Rand  KH,  Pickett  DL,  Straub  SA, 

Fauerbach LL. Three-year experience with sonicated vascular catheter cultures in 

aciinical microbiology laboratory. J Clin Microbiol 1990;28:76-82. 

50.


  Tighe MJ, Kite P, Fawley WN, Thomas D, McMahon MJ. An endoluminal brush 

to  detect  the  infected  central  venous  catheter  in  situ:  A  pilot  study.  BMJ 

1996;313:1528-9. 

51.


  Blot  F,  Nitenberg  G,  Brun-Buisson  C.  New  tools  in  diagnosing  catheter-related 

infections. Support Care Cancer 2000;8:287-92. 

52.

  Telenti  A,  Steckelberg  JM,  Stockman  L,  Edson  RS,  Roberts  GD.  Quantitative 



blood cultures in candidemia. Mayo Clin Proc 1991;66:1120-3. 

53.


  Eggimann P. Diagnosis  of intravascular catheter infection. Curr Opin Infect Dis 

2007, 20:353-9. 

54.

  Elliott TS, Tebbs SE, Moss HA, et ai. A novel serological test for the diagnosis of 



central venous catheter-associated sepsis. J Infect 2000;40:262-6. 

55.


  Oppenheim  BA.  Optimal  management  of  central  venous  catheter-related 

infections. What is the evidence? Journal of Infection 2000;40:26-30. 

56.

   Carratala J. The antibiotic-lock technique for therapy of ‘highly needed’ infected 



catheters. Clin Microbiol Infect 2002; 8:282-89. 

57.


  Fraenkel DJ, Rickard C, Lipman J. Can we achieve consensus on central venous 

catheter-related infections?. Anaesth Intensive Care 2000;28:475-90. 

58.

  Messing  B,  Peitra-Cohen  S,  Debure  A,  Beliah  M,  Bernier  JJ.  Antibiotic-lock 



technique: a new approach to optimal therapy for catheter-related sepsis in home-

parenteral nutrition patients. J Parenter Enteral Nutr 1988; 12: 185-9. 

59.

  Dimick  JB,  Pelz  RK,  Consunji  R,  Swoboda  SM,  Hendrix  CW,  Lipsett  PA. 



Increased  resource  use  associated  with  catheter-related  bloodstream  infection  in 

the surgical intensive care unit. Arch Surg 2001; 136: 229-34. 



 

75 


60.

  Mermel  LA,  Farr  BM, Sherertz  RJ,  Raad II, O’Grady  N,  Haris JS,  Craven DE. 

Guidelines for the Management of Intravascular Catheter–Related Infections. CID 

2001:32:1249-72. 

61.

  Öncü  S.  Santral  venöz  kateter  infeksiyonları  ve  tedavisi.  Klimik  Derg 



2003;16(2):162:45-51. 

62.


  Gilbert  DN,  Moellering  RC,  Sande  MA.  The  Sanford  Guide  to  Antimicrobial 

Therapy. 31 st ed. USA: Antimicrobial Therapy Ine, 2001. 

63.

  Cunha BA. Antibiotic Essentials. USA, Michigan: Physicians' Press, 2002. 



64.

  Çolak  H.  Damar  içi  kateter  infeksiyonları.  Köksal  ,  Çakar  N,  Arman  D 

(editörler). Yoğun Bakım  nfeksiyonları.  Bilimsel Tıp Yayınevi; 2005: 329-344. 


Yüklə 0,72 Mb.

Dostları ilə paylaş:
1   2   3   4   5   6   7   8




Verilənlər bazası müəlliflik hüququ ilə müdafiə olunur ©azkurs.org 2024
rəhbərliyinə müraciət

gir | qeydiyyatdan keç
    Ana səhifə


yükləyin