New tree-infesting Cecidophyes, Eriophyes, Rhyncaphytoptus and Aceria species from Hungary

Materials and Methods

Between 1990 and 2003 a mite survey was made on ornamental trees and shrubs of

streets, squares, parks, botanical gardens, private gardens, and green areas of housing es-

tates in all districts of Budapest city.

Plant samples from 307 woody species were collected in plastic bags between Jan-

uary and late November. All the plant material was examined with binocular stereomicro-

scope (upper and lower surfaces of the leaves, petioles, buds, bark, flowers, galls, etc.).

The mites found on the plant samples were put directly into lactic acid or AGA solution (al-

cohol, glycerol, acetic acid, sorbitol). After clearing the specimens in lactic acid (for 2–4

weeks in a room temperature to the desired extent), they were placed into Keifers’s medium

“2” (for 0,5–2 hours) following the Keifers’s mounting method for eriophyoid mites (Keifer,

1952). Finally, cleaned and stained mites were then placed into Keifers’s medium “3“. The

F-medium with sorbitol (Keifer, 1975) was used alternatively for mounting the specimens.

The slide preparations were dried (for 2–4 weeks) in incubator at 32 °C, and then sealed

with commercial nail varnish (Upton, 1991). Specimens were examined with a phase con-

trast microscope. The generic classification was made according to Amrine et al. (2003) and

further updating. The terminology and setal notation used in the morphological descriptions

are those of Lindquist (1996). The number of measured specimens (n) is given in parenthe-

ses in the body length. All measurements of mites were made according to Amrine and

Manson (1996) and are given in micrometers. Measurements and means are rounded off the

nearest integer. All measurements, unless specified, are length. Because some measure-

ments of holotypes could not be made, due to the position of the mounted mite, means are

reported, with range in parentheses.

Holotypes and paratypes are deposited in the Hungarian Natural History Museum,

Budapest, Hungary.

Abbreviations in drawings – API, internal female genitalia; CS, lateral view of cau-

dal opisthosoma; DA, dorsal view of the prodorsal shield; E, empodium; ES, lateral view

of annuli; GF, coxal and genital region of female; GM, genital region of male; L1, foreleg;

LO, lateral opisthosoma; SA, lateral view of anterior region.

Cecidophyes siculus n. sp.

D

IAGNOSIS

– prodorsal shield pattern composed of a light median line on the poste-

rior part, two admedian lines followed by four submedian lines; two transverse lines from

admedian and submedian field. Empodium 6-rayed, coxae smooth; genital region smooth.

Ripka: New tree-infesting mites

Acta Phytopathologica et Entomologica Hungarica 44, 2009

88

---

F

EMALE

(Fig. 1) – Body elongate fusiform, 195 (143–195, n

= 4), 59 (52–59) thick.

Gnathosoma 21 (20–21), projecting obliquely downwards; chelicerae 16 (15–20), seta d 4

(3–4). Prodorsal shield 33 (30–33), 35 (35–37) wide, semielliptical anteriorly, with short,

gradually acuminate anteromedian lobe over gnathosomal base; shield pattern composed

of a light median line on the one-third posterior part, two admedian lines followed by four

submedian lines; two transverse lines from admedian and submedian field. Tubercles sc and

setae sc absent.

Foreleg 43 (40–43), tibia 6 (6–9), tarsus 7 (7–8),

~ 7 (7–8), distally rounded, em-

podium simple, 6-rayed. Hindleg 40 (37–40), tibia 5 (5–6), tarsus 7 (5–7),

~ 8 (7–8), dis-

tally rounded, empodium simple, 6-rayed.

Coxae smooth; setae 1b 10 (4–10), tubercles 1b 7 (7–8) apart, setae 1a 22 (14–22),

tubercles 1a 14 (13–14) apart, setae 2a 30 (22–30), tubercles 2a 27 (24–27) apart. Proster-

nal apodeme 3 (3–4).