AZƏRƏbaycan miLLİ elmlər akademiyasi zoologiya institutu

Yüklə 8,61 Mb.

səhifə	11/11
tarix	12.02.2017
ölçüsü	8,61 Mb.
	#8283

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11

ƏMƏLİ TƏKLİFLƏR
ƏDƏBİYYAT SİYAHISI
2, p.87-91.
Dubey J.P., David S.L. Neosporosis, Toxoplasmosis, and Sarcocystosis in Ruminants // Vet Clin Food Anim., 2006

NƏTİCƏLƏR
1. Azərbaycanda qoyunlarda iki növ sarkosporidinin – Sarcosystis gigantea və S.tenella parazitlik etdiyi təsdiq edilmişdir.

2.Müəyyən edilmişdir ki, respublika üzrə qoyunların S.gigantea ilə yoluxması 6,1%, S.tenella ilə yoluxması isə 84,8%-dir. S.gigantea sistalarına xüsusilə qida borusu əzələlərində təsadüf edildiyi halda, S.tenella–nın qida borusu ilə yanaşı qarın, diafraqma, dil əzələləri və ürəkdə lokalizasiya olunduğu müəyyənləşdirilmişdir.

3. Müəyyən edilmişdir ki, qoyunların S.gigantea ilə yoluxma ekstensivliyi və intensivliyi heyvanların yaşından, cinsiyyətindən və fəsillərdən asılı olaraq dəyişir. Qoyunların ilin fəsillərindən asılı olaraq S.gigantea ilə yoluxma ekstensivliyi öyrənilərək müəyyən edilmişdir ki, bütün Respublika üzrə qoyunların bu növ parazitlə ən çox yoluxmasına yaz (8,0%, 250/20) və payız (6,4%, 173/11), ən az isə yay (4,6%, 240/11) və qış fəslindədir (3,6%, 112/4).

4. Abşeron, Biləsuvar, Sabirabad və İmişli rayonlarında qoyunlardan toplanan materialların tədqiqi nəticəsində məlum olmuşdur ki, qida borusu əzələlərinin mikrosistalarla yoluxma ekstensivliyi 4,91-8,88%-dir. Bu zaman invaziyanın intensivliyi 7-13 sarkosistadır. İnvaziyanın ən yüksək intensivliyi Abşeron rayonunda, ən az intensivliyi isə Biləsuvar rayonunda müşahidə olunmuşdur. Qida borusundan sonra ən çox yoluxan diafraqma (2,14-3,18%), ən az yoluxanı ürək əzələsi olmuşdur (0,64-1,78%).

5.Poliakrilamid gel elektroforez metodu ilə ilk dəfə S.tenella sistalarından 20, onların lokalizasiya olunduğu qida borusundan 15 zülal fraksiyası ayrılmışdır. Bu fraksiyalardan 10 fraksiyanın elektroforetik hərəkət sürəti eyni olmuşdur.

6. Müəyyən edilmişdir ki, qoyunların S.tenella ilə yoluxması zamanı qaraciyər, qida borusu, ürək və diafraqmanın zülalların miqdarında əsaslı dəyişkənliklər baş verir. Qaraciyərdə dəyişkənliklər 59,29%, diafraqmada 33,33%, ürək və diafraqmada isə müvafiq olaraq 18,75 və 40,00% zülalı əhatə edir. Sarkosporidioz əksər ləng hərəkətli, yüksək molekul kütləli zülalların miqdarının artmasına səbəb olur.

8.Müəyyən edilmişdir ki, xroniki sarkosporidioz zamanı əzələ toxumalarının kəskin zədələnməsinin nəticəsi olaraq qoyunların qan zərdabında ALT-nin aktivliyi, AST-nin aktivliyini üstələyir. Bu zaman De-Ritis göstəricisinin (AST/ALT) qiyməti azalır.

9. Müəyyən edilmişdir ki, sarkosporidioz nəticəsində aminotransferazaların aktivliyi illik orta göstərici ilə müqayisədə artır. Sağlam heyvanların qanında transaminazaların aktivliyinə heyvanların yaşı ilə bərabər eyni zamanda onların cinsiyyəti də təsir göstərir.

ƏMƏLİ TƏKLİFLƏR

1.De-Ritis (AST/ALT) göstəricisindən qoyunların sarkosporidiozunun diaqnos-tikasında əlavə test kimi istifadə edilməsi təklif olunur. Xroniki sarkosporidioz zamanı De-Ritis göstəricisinin qiyməti azalır.

2.Ətraf mühitin S.tenella və S.gigantea sporosistaları ilə “çirklənməsi” nəticəsində qoyunları yoluxmadan qorumaq məqsədilə heyvanlar saxlanılan binaların sanitariya vəziyyətinə, heyvanların saxlanılma şəraitinə, qidanın, yemin, suyun təmizliyinə diqqət yetirilməlidir. Parazitlərin əsas sahibi olan itlər və pişiklər S.tenella və S.gigantea sporosistalarını kütləvi şəkildə yaydığı üçün, heyvanların saxlanıldığı ərazidən təcrid olunmalıdır.

3.Tədqiqatların nəticələrindən sarkosporidioza qarşı mübarizə tədbirlərinin hazırlanmasında, tədris prosesində və dərsliklərin hazırlanmasında istifadə edilə bilər.

ƏDƏBİYYAT SİYAHISI

Azərbaycanın Milli Ensiklopediyası. Bakı 2007, 883s.
Mahmudov S.Ç. Azərbaycanda qoyunların və camışların sarkosporidiozları (parazitoloji və biokimyəvi baxış). Biol. elm. nami. .... avtoref., Bakı, 1995, 18s.
Namazova A.A. Azərbaycanda qoyunların Sarcocystis tenella ilə yaşa görə yoluxması // Azərbaycan Zooloqlar Cəmiyyətinin Əsərləri, Bakı, 2010, cild 2, s. 80-83.
Namazova A.A. Məmmədova M.Ə. Azərbaycanda ev qoyunlarının şaquli qurşaqlardan asılı olaraq sarkosporidilərlə yoluxması //AMEA Zoologiya İnstitutunun Əsərləri, cild XXIX, Bakı, 2011, s.234-238.
Namazova A.A. Məmmədova M.Ə. Qoyunların sarkosporidilərlə (Protozoa, Apicomplexa, Coccidia) yoluxmasının sahibin cinsiyyətindən asılılığı //AMEA Zoologiya İnstitutunun Əsərləri, cild XXX, №1, Bakı, 2012, s.214-220.
Yolçiyev Y.Y., Mahmudov S.Ç. Azərbaycanda camışların sarkosporidio-zunun epizotologiyası (Sarcocystis fusiformis) // Azərb. EA Xəbərləri, biol. elm. ser., 1997, № 1-6, s.30-38.
Афанасьева А.И., Буц Н.Ю., Катаманов С.Г. Белковый состав сыворотки крови овец западно-сибирской мясной породы в зависимости от сезона рождения // Вестник Алтайского государственного аграрного университета, 2012, т.2, №88, c. 66-70.
Афонский С.И. Биохимия животных. Изд.: «Высшая школа», Москва, 1970, 612 с.
Багирзаде С.С.Содержание ДНК в цистах Sarcocystis fusiformis и S.gigantea // Изв. АН Аз. ССР. сер. биол. наук, 1989, №2, с.43-45.
Баймишева Д.Ш., Гасанов Р.Р. Потребительские свойства безопасности говядины. Безопасность и качество товаров /Материалы VII Межд. науч.практ.конф., Саратов 2013, с.3-5.
Бейер Т.Б., Шибалова Т.А., Костенко Л.А. Цитология кокцидий. Л., Наука, 1978, 186с.
Бейер Т.В. Современное представление о саркоспоридиях (Sarcocystis, Eimeriidae, Sporozoa, Apicomplexa): морфофункциональная организация, жизненный цикл, практическое значение // Паразитология, 1988, т.22, №1, с. 3-13.
Богуш А.А. Влияние саркоспоридиозной инвазии на качество свинины // Ветеринария, 1975, №8, с.101-103.
Высоцкая Р.У. Углеводный, липидный и аминокислотный состав некоторых гельминтов пресноводных рыб. Автореф. канд. дис. Петрозаводск, 1973, с. 13-15.
Гаибова Г.Д. Зараженность рогатого скота саркоспоридиями и проблемы их видовой идентификации // Известия НАН Азербайджана. Сер. биол. наук., 2001, № 1-3, с.74-85.
Гаибова Г.Д. Кокцидии (Coccidia, Sporozoa) Азербайджана и морфо-функциональные особенности их жизненных циклов. Автореф. дис. … докт. биол. наук, Баку, 2005, 45 с.
Гаибова Г.Д. Цитофотометрические исследование полисахаридов в цистных стадиях Sarcocystis fusuformis (Apicomplexa, Sporozoa) // Цитология, 1992, т.34, №4, с.38.
Гаибова Г.Д., Искендерова Н.Г. Зараженность рогатого скота кокцидиями (Sporozoa, Apicomplexa) в хозяйстве Азербайджана в зависимости от высоты над уровнем моря // Azərbaycan Zooloqlar Cəmiyyətinin əsərləri. 2012, c.4, №2, s.101-106.
Гаибова Г.Д., Искендерова Н.Г. К вопросу об источниках заражения саркоспоридиями рогатого скота в Азербайджане // Материалы IV Всероссийского Съезда Паразитологического общества при Российской академии наук. «Паразитология в XXI веке – проблемы, методы, решения». Т.1. Санкт-Петербург: «Лема». 2008. с. 146-149
Данилова, Л. А. Анализы крови и мочи. СПб.: Изд-во Деан, 1999, 128с.
Елчиев Я.Я., Мадатов Р.И., Ахмедов Э.И. Алиева Ф.З. Белковый и аминокислотный состав ооцист эймерий и цист саркоспоридий / Тезисы докладов 2-го совещ. Паразитол. общества при РАН, Санкт-Петербург, 1996, с. 34.
Есимов Б.К. Зараженность свиней саркоцистями в Кокчетавской области // Соврем.проблемы. протозоолог. / Мат., 4-го съезда Всес.общ. протозоол., Ленинград, 1987, с.131.
Исазаде Д.М., Суркова А.М. Встречаемость саркоспоридий у рогатого скота в восточном Азербайджане // Соврем.проблемы протозоол. / Мат., 4-го съезда Всес.общ.протозоол., Ленинград, 1987, с.137.
Искендерова Н.Г. Особенности кокцидиофауны сельскохозяйственных животных в фермерских хозяйствах некоторых районов Азербайджана. Дис. ... канд. биол.наук. Баку, 2007,142с.
Кашин А.С. Антропогенно-экологические органопатологии молодняка животных // Профилактика и терапия, Барнаул, 2002, с.
Клиническая оценка лабораторных тестов. Под ред. Н. У. Тица. М.: Медицина, 1986, 480 с.
Колб В.Г., Камышников В.С. Клиническая биохимия. Минск, Беларусь, 1976, с.5-112.
Котарев И.В., Стебенева Е.А. Взаимосвязь показателей крови овец с их продуктивностью // Вестник Воронежского государственного аграрного университета. 2011, № 2(29), с. 88-91.
Кочетов Г.А. Практическoе руководство по энзимологии. М. Высшая школа, 1980, с. 224-225.
Лакота Е.А., Воронцова О.А., Полников И.А., Гальцев Ю.И. Показатели крови, неспецифическая резистентность и продуктивность тонкорунных овец разных генотипов // Вавиловский журнал генетики и селекции, 2012, Том 16, № 4/2, с. 1005-1007.
Ленинджер, А. Биохимия . Пер. с англ. М.: Мир, 1976, 957 с.
Луцук С. Н., Водянов А. А., Толоконников В. П. и др. Морфология, биология и лабораторная диагностика возбудителей протозойных заболеваний животных: учебно-методическое пособие. Ставропольский государственный аграрный университет. Ставрополь, АГРУС, 2009, 60 с.
Мамедов И.Б. Распространение кокцидий сельскохозяйственных животных в Нахчыванской АР Азербайджана // Вестник Алтайского государственного аграрного университета, 2013, № 4(102), с.63-66.
Мамедов И.Б. Саркоспоридиоз овец в условиях Нахчыванской Автономной Республики Азербайджана // Вестник Алтайского государствен-ного аграрного университета, 2012, № 4(90), с. 54-56
Мауер Г. Диск-электрофорез. М., Мир, 1971, с.159-158.
Методы санитарно-паразитологической экспертизы мяса и мясной продукции: Методические указания. М.: Федеральный центр гигиены и эпидемиологии. Роспотребнадзора, 2011,19 с.
Метсис А.Л. Распределение кислот фосфатфзы в цистах Sarcocystis bovicanis (Apicomplexa, Sporozoa) // Соврем. проб. протозол., / Матер. 4-го съезда Всес. общ. протозоол., Ленинград, 1987, с. 124.
Миллер И.В. Распространение саркоцистоза крупного рогатого скота в Эстонской ССР // Соврем. проблемы протозоол. Мат. 4-го съезда Всес. общ. протозоол., Ленинград, 1987, с. 146.
Мосс Д.В., Баттерворт П.Д. Энзимология и медицина. М., 1978, 365 с.
Мусаев М.А., Елчиев Я.Я., Багирзаде С.С. Активность дезоксирибо-нуклеазы II в цистах Sarcocystis fusiformis и S.gigantea // Паразитология, 1988, т.22, №3, с.193-195.
Мусаев М.А., Елчиев Я.Я., Мамедалиева Р.Ю. Аминокислоты и их метаболиты цист Sarcocystis fusiformes и S.gigantea / Журнал Паразитология, 1988, т. 22, вып. 2, с.178-179
Мусаев М.А., Мамедалиева Р.Ю., Багирзаде С.С. Некоторые биохимические особенности цист Sarcocystis fusiformis и S.gigantea (Apicomplexa, Sarcocystis) / Матер. науч. конф. УРНОП, 1986, с. 39-40.
Мусаев М.А., Суркова А.М., Гаибова Г.Д. Выделение неспорулиро-ванных спороцист саркоспоридии при экспериментальном саркоспоридиозе. / Соврем. проб. протозоол. Мат.4-го съезде Всес. общ. протозоологов. Л., 1987, с. 147.
Новак М.Д., Омаров Б.С. Клиническая картина, показатели уровня электролитов и глюкозы у телят при заражении Sarcocystis bovicanis // Соврем. проб. протозоол., /Матер. 4-го съезда Всес. общ. протозоол., Ленинград, 1987, с.218.
Новак М.Д., Соколова В.М., Макшакова Е.Б. Распространение, лечение и профилактика смешанных форм инвазий овец и коз в центральном районе российской федерации // Вестник ФГ БОУ ВПО РГ АТУ, 2013, № 3(19), c.36-42
Омаров Б.С., Есимов Б.К. Некоторые биохимические показатели крови при экспериментальном саркоспоридиозе свиней // Биологические ресурсы и проблемы экологии Сибири / Тез. докл. 3-ей регионал. конф. молодых ученых. Улан-Уде, 1990, с.104-105.
Переверзев Д. Б., Мещеряков Р. К. Биохимические показатели крови холмогорских и холмогор голштинских телок // Селекция, кормление, содержание сельскохозяйственных животных и технология производства продуктов животноводства / Сб. науч. тр. ВНИИ племенного дела. М., 1998, Вып.3, с. 49-52.
Попов Ю.А. Аллергическая диагностика саркоцистоза овец // Соврем. проблемы протозоол. Мат.4-го съезде Всес. общ. протозоол. Л., 1987, с. 152-153.
Радченко А. И., Гаибова Г. Д. Возможные пути транспорта веществ в мышечных цистах двух видов саркоспоридий (Sarcocystis, Apicomplexa, Sporozoa) // Цитология, 1993, №35 (4), с.134-137.
Радченко А.И., Бейер Т.В. Изменения ультраструктуры миофибрилл языка овцы при заражении Sarcocystis ovifelis (Sporozoa, Apicomplexa) // Цитология, 2006, т.48, №8, с.669-673.
Радченко А.И., Бейер Т.В. Структурный анализ и функциональные особенности поверхностного аппарата саркоцист четырех видов саркоспоридий (Sarcocystis, Sporozoa) // Цитология. 2005, т.47 (9) с.766-773.
Ронжина Т.Г. Возрастная динамика активности аминотрансфераз в сыворотке крови и ее связь с живой массой бычков герефордской породы // Совершенствование существующих и создание новых пород и типов мясного скота / Науч. тр. ВНИИ мясного скотоводства, Оренбург, 1985, с.83 -85.
Рябов С.А. Листишенко А.А. Экологические закономерности саркоцистоза северных оленей в Ямало-Ненецком автономном округе // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. Новосибирск: ИПФ «АГРОС», 2007, №4, с.135-136.
Салимов В А, Абакумов В.И., Гасанов Р.Р. Мониторинг саркоцистоза коров в хозяйствах Самарской области // Известия ФГОУ ВПО СГСХА №1, 2008 c.127-129
Саркоспоридий животных в Казахстане. Под. ред. Панин В.Я. Алма-Ата, Наука, 1984, 228 с.
Силкина С.Ф., Барнаш Е.Н. Морфо-биохимические показатели крови овец карачаевской породы в разных условиях содержания // Ж. Овцы, козы, шерстяное дело, № 2, 2012, c.83-86.
Трухачев В.И., Лапина Т.И. Морфофункциональный статус ново-рожденных ягнят в зависимости от плацентарных условий развития. ЗАО «Сулинполиграфсервис», 2007, 211с.
Хван Н.Г. Диагностическая ценность РСК, РДСК и НРИФ при спонтанном и экспериментальном саркоцистозе овец / Соврем. проб. пртозоол. Мат.4-го съезде Всес. общ. протозоологов. Л., 1987, с. 162.
Шемарова И.В. Лаковникова Е.В Распространение саркоцистоза среди овец и крупного рогатого скота / B сб. науч. тр. ЯВИ., Львов,1987, т91, с.61-65.
Шкилёв П.Н., Газеев И.Р. Влияние пола, физиологического состояния и сезона года на гематологические показатели молодняка овец южноуральской породы // Зоотехния, 2012, с.89-90.
Abdel-Baki A.S, Abdel-Haleem H.M, Al-Quraishy S. A new Sarcocystis species (Apicomplexa: Sarcocystidae) from the rock gecko Bunopus tuberculatus in Saudi Arabia //J Parasitol., 2012, № 98(5), p.951-953.
Abdel-Azeem, Abdel-Baki, Gamal Allam, Thabet Sakran, et al. Lambs Infected with UV-Attenuated Sporocysts of Sarcocystis ovicanis Produced Abnormal Sarcocysts and Induced Protective Immunity against a Challenge Infection // Korean J Parasitol. 2009, Vol. 47, No.2, p.131-138.
Abigail M.B., Waren N.B. Histopathology of protozoal infection in animals: a retrospective study at the University of Philippines College of Veterinary Medicine (1972-2010) // Veterinaria Italiana, 2012, №48 (1), p.99-107
Acha P.N, Szyfres B. Zoonoses and communicable diseases common to man and animals, 3rd ed., vol. III: Parasitoses, Pan American Health Organization (PAHO), Washington D.C. 2003.
Al-Hyali N.S., Kennany E.R., KhalilL.Y.^.Fate of macrosarcocyst of Sarcocystis gigantea in sheep // Iraqi Journal of Veterinary Sciences, 2011, v.25, №2, p.87-91.
Andrews C.A, Fayer R, Dubey J.P: Continuous in vitro cultivation of Sarcocystis cruzi // J Parasitol 1990, №76, p.254-255.
Anja R.H., Astrid M.T. Comparison of immunological and molecular methods for the diagnosis of infections with pathogenic sarcocystis species in sheep // Tokai J Exp Clin Med., 1999, v. 23, №6, p.293-302,
Arun M.D, Placid E.D.S., Ananda, K.J., Puttalakshmamma G.C. Prevalence of Sarcocystosis in Goats slaughtered at an abattoir in Bangalore, Karnataka state // Veterinary World, 2008, v.1(11), p.335-337.
Bahari P., Salehi M., Seyedabadi M., Mohammadi A. molecular identifica-tion of macroscopic and microscopic cysts of sarcocystis in sheep in North Khorasan province, Iran // IJMCM, 2014, Vol 3, № 9, p.1-6. www.ijmcmed.org‎
Barham M, Stützer H, Neiss W.F. Seasonal variation in sarcocystis species infections in goats in northern Iraq // Parazitol., 2005, №130 (2), p.151-156.
Beyazit A., Yazıcıoğlu O, Karaer Z. The prevalence of ovine Sarcocystis species in Izmir province // Ankara Üniv Vet Fak Derg, 2007, №54, p.111-116,
Burcham G.N, Ramos-Vara J.A, Vemulapalli R. Systemic sarcocystosis in a striped skunk (Mephitis mephitis) // Vet Pathol. 2010, №47(3), p.560-564.
Caldow J.R. Gidlow, G.L. Clinical, Pathological and epidemiological findigs in three outbreaks of ovine protozoan myeloencephalitis I G.L., A. Schock II /// Veter. Rec., 2000, v.146, №1, p. 7-10.
Capron A. Ge langage moleculaire des parasites // Med. Sci., 1995, v.1, №3, p. 431-439.
Carletti T, Martin M, Romero S, Morrison D.A, et al.. Molecular identifica-tion of Sarcocystis aucheniae as the macrocyst-forming parasite of llamas // Vet Parasitol., 2013, №198(3-4), p.396-400.
Caspari K., Grimm F., Kuhn N., Caspari N.C., Basso W. First report of naturally acquired clinical sarcocystosis in a pig breeding stock // Vet Parasitol., 2010, №177, p.175-178.
Chaudhru R.K. Kushwah H.S., Shah H.L. Biochemical and histochemical studies of the Sarcocystis of Sarcocystis fusiformis of bufallo Bubalus bubalus // Vet. Parasitol., 1986, v.21, N4, p.271-273.
Chen X, He Y, Liu Y, Olias P, Rosenthal B.M, et al.. Infections with Sarcocystis wenzeli are prevalent in the chickens of Yunnan Province, China, but not in the flocks of domesticated pigeons or ducks // Exp Parasitol. 2012, №131(1), p.31-34.
Dahlgren S.S, Gjerde B. Molecular characterization of five Sarcocystis species in red deer (Cervus elaphus), including Sarcocystis hjorti n. sp., reveals that these species are not intermediate host specific. // Parasitology. 2010, v.137, № 5, p.815-840.
Davies J.L, Haldorson G.J, Bradway D.S, Britton A.P. Fatal hepatic sarcocystosis in a captive black bear (Ursus americanus) associated with Sarcocystis canis-like infection // J Vet Diagn Invest., 2011, v.23, №2, p.379-383.
Davis В. J. Disc electrophoresis. Metods and application to human sorum prorein // Ann. N. Y. Acad. Sci., 1964, v.121, №1, p.404-421.
Dessouky N.I., Mohamed A.H., Nasser A.M., Hilali M. Haematological and biochemical changes in buffalo calves inoculated with Sarcocystis fusiformis from cats // Vet. Parasitol., 1984, vol.14. N1, p.1-6.
Dubey J. P., Reichard M. V., Torretti L., Garvon J. M., et al.. Two new species of Sarcocystis (Apicomplexa: Sarcocystidae) infecting the wolverine (Gulo gulo) from Nunavut, Canada. The Journal of Parasitology, 2010a, v.96(5), p.972-976.
Dubey J. P., Zarnke R., Thomas N. J., Wong S. K., et al. Toxoplasma gondii, Neospora caninum, and Sarcocystis canis-like infections in marine mammals. // Veterinary Parasitology, 2003b, v.116, № 4, p.275-296.
Dubey J.P, Rosenthal B.M. Sarcocystis capracanis-associated encephalitis in sheep // Vet Parasitol. 2013, v.197, № 1-2, p. 407-8.
Dubey J.P, Speer C.A, Fayer R. Sarcocystosis of Animals and Man // CRC Pres., Inc. Boca Raton, Florida. 1989.p.113-120.
Dubey J.P., David S.L. Neosporosis, Toxoplasmosis, and Sarcocystosis in Ruminants // Vet Clin Food Anim., 2006, № 2, p. 645-671.
Dubey J.P., Humphreys J.G., Fritz D.A New Species of Sarcocystis (Apicomplexa: Sarcocystidae) from the Black Bear (Ursus americanus) //Journal of Parasitology, 2008, v. 94, №2, p. 496-499.
Dubey J.P., Reichard M.V., Torretti L., Garvon J. M., et al.. Two new species of Sarcocystis (Apicomplexa: Sarcocystidae) infecting the wolverine (Gulo gulo) from Nunavut, Canada // The Journal of Parasitology, 2010a, v.96, № 5, p. 972-976.
Dubey J.P., Rosenthal B.M., Felix T.A. Morphologic and molecular characterization of the sarcocysts of Sarcocystis rileyi (Apicomplexa: Sarcocystidae) from the mallard duck (Anas platyrhynchos) // The Journal of Parasitology, 2010b, v. 96, №4, p.765-770.
Epe C, Ising-Volmer S, Stoye M. Parasitological fecal studies of equids, dogs, cats and hedgehogs during the years 1984-1991 // Dtsch Tierärztl Wochenschr,

1993, v.100, №11, p.424-432.

Fatani A, Hilali M, Al-Atiya S, Al-Shami S. Prevalence of Sarcocystis in camels (Camelus dromedarius) from Al-Ahsa, Saudi Arabia // Vet Parasitol., 1996, №62, p.241-245.
Fayer R, Dubey J.P, Leek R.G. Infectivity of Sarcocystis spp. from bison, elk, moose, and cattle for cattle via sprocysts from coyotes // J Parasitol., 1982, №68, p.681-685.
Fayer R. Sarcocystis spp. in Human Infections // Clin. Microbiol., 2004, №17, p.894-902.
Fayer R., Leek R. G.. Excystation of Sarcocystis fusiformis sporocysts from dogs // Proceedings of the Helminthological Society of Washington, 1973, v.40, p.294-296.
Formisano P, Aldridge B, Alony Y, Beekhuis L, Davies E.D, et al. Identification of Sarcocystis capracanis in cerebrospinal fluid from sheep with neurological disease. // Vet Parasitol., 2013, v.193, №1-3, p.252-255.
Fritz D. L., Dubey J. P. Pathology of Sarcocystis neurona in interferon-gamma gene knockout mice. Veterinary Pathology, 2002, v.39(1), p.137–140.
Fukuyo M, Battsetseg G, Byambaa B. Prevalence of Sarcocystis infection in meat-producing animals in Mongolia Southeast Asian // J Trop. Med. Public. Health 2002, №33, p.490-495.
Giboda M, Ditrich O, Schoz T, Viengsay T, et al. Current status of food-borne parasitic zoonoses in Laos // Southeast Asian J.Trop.Med Public. Health. 1991, №22, p. 56-61.
Gjerde B. Morphological and molecular characterization and phylogenetic placement of Sarcocystis capreolicanis and Sarcocystis silva n. sp. from roe deer (Capreolus capreolus) in Norway // Parasitol Res., 2012, v.110, № 3, p.1225-1237.
Gjerde B., Dahlgren S.S. Corvid birds (Corvidae) act as definitive hosts for Sarcocystis ovalis in moose (Alces alces) // Parasitology Research, 2010, v.107, №6, p. 1445-1453.
Gjerde P.B. Hylogenetic relationships among Sarcocystis species in cervids, cattle and sheep inferred from the mitochondrial cytochrome c oxidase subunit I gene // Int J. Parasitol., 2013, v.43, №7, p.579-91.
Goethe R, Reichler J, 1990. The frequency of coccidial infection in dog families of different husbandry and breeds in south Germany // Tierärztl Prax, 1990, v. 18, №4, p. 407-413.
Guclu F, Aldem OS, Guler L. Differential identification of cattle Sarcocystis spp. by random amplified Polymorphic DNA Polymerase chain reaction (RAPD-PCR). // Revue d Elevage et de Medecine Veterynaire, 2004, №155, p.440-444.
Haralabidis S.T, Papazachariadou M.G, Koutinas A.F, Rallis T.S. A survey on the prevalence of gastrointestinal parasites of dogs in the area Thessaloniki, Greece // J. Helminthol., 1988, v.62, №1, p.45-49.
Harris D.J, Maia J.P, Perera A. Molecular survey of Apicomplexa in Podarcis wall lizards detects Hepatozoon, Sarcocystis, and Eimeria species // J. Parasitol. 2012, v.98(3), p.592-597
Hettiarachchi D.C. Rajapakse R.P. Antigenic analysis of bovine Sarcocystis spp. in Sri Lanka // J.Natn.Sci.Foundation Sri Lanka, 2008, v.36, №3, p.239-244
Hilali M., El-Seify M., Zayed A., El-Morsey A., et al. Sarcocystis dubeyi (Huong and Uggla, 1999) infection in water buffaloes (Bubalus bubalis) from Egypt // J. Parasitol., 2011, v.97, №3, p.527-535.
Hu J.J., Liao J.Y., Meng Y., Guo Y.M., et al. Identification of Sarcocystis cymruensis in wild Rattus flavipectus and Rattus norvegicus from Peoples Republic of China and its transmission to rats and cats // The Journal of Parasitology, 2011, v.97, №3, p.421-424.
Hussein H.S, Warrag H. Prevalence of Sarcocystis in food animals in Sudan. //Trop. Anim. Health Prod., 1985, №17, p.100-101.
Jehle C., Dinkel A., Sander A., Morent M., et al. Diagnosis of Sarcocystis spp. in cattle (Bos taurus) and water buffalo (Bubalus bubalis) in Northern Vietnam // Veterinary Parasitology, 2009, v.166, №3-4, p.314-320.
Kalantari N., Masomeh M., Ghaffari S. Sarcocystis cruzi: First Molecular Identification from Cattle in Iran // Int J Mol Cell Med., 2013, v.2, №7, с.126-130.
Kia E.B, Mirhendi H, Rezaeian M, Zahabiun F. et al. First molecular identification of Sarcocystis miescheriana (Protozoa, Apicomplexa) from wild boar (Sus scrofa) in Iran // Exp Parasitol., 2011, v.127, №3, p.724-6.
Kirmse P, Mohanbabu B. Sarcocystis spp. in the one humped camel (Camelus dromedarius) from Afghanistan // Brit. Vet. J., 1986, №142, p.73-74
Koudela B., Modry D.. Sarcocystis muris possesses both diheteroxenous and dihomoxenous characters of life cycle // The Journal of Parasitology, 2000, v.86, №4, p. 877-889.
Kutkiene L., Prakas P., Sruoga A., Butkauskas D. Identification of Sarcocystis rileyi from the mallard duck (Anas platyrhynchos) in Europe: cyst morphology and results of DNA analysis // Parasitology Research, 2011, v.108, № 3, p.709-714.
Latif B.M., Al-Delemi J.K, Mohammed B.S, Al-Bayati S.M., et al. Prevalence of Sarcocystis spp. in meat-producing animals in Iraq // Vet. Parasitol. 1999, v.84, p.85-90.
Latif B, Vellayan S, Omar E, Abdullah S., et al. (2010). Sarcocystosis among Wild Captive and Zoo Animals in Malaysia // The Korean Journal of Parasitology, 2010, v.48, p.213-217.
Lau Y.L., Chang P.Y., Subramaniam V., Ng Y.H., et al. Genetic assem-blage of Sarcocystis spp. in Malaysian snakes // Parasit Vectors., 2013, v.6, №1, p.257.
Levine, N.D., Lee J.J., Hunter S.H., Bovee E.C. et al. Phylum II. Apicomplexa Levine 1970. In ‘‘An Illustrated Guide to the Protozoa’’ 1985, pp. 322–374.
Mahrt J.L., Fayer R. Hematologic and serologic changes in calves experimentally infected with Sarcocystis fusiformis // J.Parasitol., 1976, vol.61, N5, p.967-969.
Makhija M. Histological identification of muscular sarcocystis: a report of two cases // Indian J Pathol Microbiol., 2012, v.55, №4, p.552-554.
Marsh, A.E. Johnson P.J., Ramos-Vara J., Johnson G.C. Characterization of a Sarcocystis neurona isolate from a Missout with equine protozoal myeloencephalitis // Veter. Parasitol., 2001, v.95, №2/4, p. 143-154.
Mindaugas M., Jadvyga G. Sarcocystis infection in wild ungulates in Lithuania // Acta Zoologica Lituanica, 2002, v.12, №4, p.372-380.
More G., Abrahamovich P., Jurado S., Bacigalupe D., et al. Prevalence of Sarcocystis spp. in Argentinean cattle. Vet. Parasitol., 2011, №177, p.162-165.
Morsy K., Saleh A., Al-Ghamdi A., Abdel-Ghaffar F., et al. Prevalence pattern and biology of Sarcocystis capracanis infection in the Egyptian goats: a light and ultrastructural study //Vet Parasitol., 2011, v.181, №2-4, p.75-82.
Motamedi G.R., Dalimi A., Nouri A, Aghaeipour K. Ultrastructural and molecular characterization of Sarcocystis isolated from camel (Camelus dromedarius) in Iran // Parasitol Res., 2011, v.108, №4, p.949-54.
Munday B.L., Obendorf D.L., Morphology of Sarcocystis gigantea in experimentally – infected sheep // Vet. Parasitol., 1984, v.16, N3-4, p.193-199.
Norlida O., Zarina M, Latif B., Abo Rahman., et al. A istopathological Appraisal of Ovine Sarcocystosis in Kelantan // Journal of Advanced Biomedical & Pathobiology Research, 2012, v.2, №4, p.137-142
Obrenovi S., Kati-Radivojevi S., Stankovi B. Sarcocystiosis in dogs in several regions of Serbia // Acta Veterinaria (Beograd), 2003, v.53. №1, p.19-26.
Odening K. The present state of species-systematics in Sarcocystis Lankester, 1882 (Protista, Sporozoa, Coccidia) // Systematic Parasitology, 1998, v.41, №3, p. 209-233.
Odening K.. Relations between occurrences of Sarcocystis infection in wild, domestic and zoo animals // Der Zoologische Garten, 1997, v.67, № 6, p.317-340 (In German with English summary).
Oryan A, Sharifiyazdi H, Khordadmehr M, Larki S.Characterization of Sarcocystis fusiformis based on sequencing and PCR-RFLP in water buffalo

(Bubalus bubalis) in Iran // Parasitol Res., 2011, v.109, №6, p.1563-70.

Ozmen O., Sahinduran, S., Yukari, B.A. Comparative evaluation on clinicopathological findings and treatment in acute and chronic Coccidiosis of lambs and kids // Indian Veterinary Journal, 2004. v.81, p.1206-1209.
Pérez-Creo A, Panadero R, López C, Díaz P, Vázquez L, Díez-Baños P, Morrondo P. Prevalence and identity of Sarcocystis spp. in roe deer (Capreolus capreolus) in Spain: A morphological study // Res. Vet. Sci., 2013, №1, p. 00285-3.
Petras P., Dalius B.. Protozoan parasites from genus Sarcocystis and their investigations in Lithuania // Ekologija. 2012, v. 58, №1, p.45–58.
Philipp O., Achim D. Gruber A., Kohls, et al.. Sarcocystis Species Lethal for Domestic Pigeons // Emerg Infect Dis., 2010, v.16, №3, p.497-499.
Pusterla N., Packham A., Wilson W.D, White A., et al.. Evaluation of the kinetics of antibodies against Sarcocystis neurona in serum from seropositive healthy horses without neurological deficits treated with ponazuril paste // Vet Rec., 2013, v.173, №10, p.249.
Radostits O.M., Gay C.C., Hinchcliff K.W., Constable, P.D. Diseases associated with protozoa / 10th Edn. In: Veterinary Medicine: A Textbook of Diseases of cattle, horses, sheep, pigs, and goats. Saunders Elsevier, 2008. pp.1483-1540
Rahdar M, Salehi M. The prevalence of Sarcocystis infection in meat-production by using digestion method in Ahvaz, Iran // Jundishapur J. Microbiol. 2011, v.4, №4, p.295-299.
Reiner G, Huabner K, Hepp S. Suffering in diseased pigs as expressed by behavioural, clinical and clinical-chemical traits, in a well defined parasite model // Appl Anim Behav Sci., 2009, v.118, p.222-231.
Ruta Medne, Anna Krūklīte, Kristīne Šteina. Sarcocystosis of pigs and wild boar Animals /Health. Food Hygiene. International scientific conference Proceeding 2010, Jelgava, Latvia, p.84-89.
Saieque A., Bhatia B.B., Juyal P.D., Rahman H.. Toxicity of cyst extract of Sarcocystis fusiformis from buffalo in rabbits and mice // Veter. Parasitol., 1991, v.38

№1, p.61-65.

Saville W.J.A., Reed S.M., Dubey J.P. Prevention of protozoal myeloencephalitis (EPM). AAEP Proceedings., 2002, v.48, p.181–185.
Savini G., Dunsmore I.D., Robertson I.D., Seneviratna P. The epidemilogy of Sarcocystis sp. in cattle of western Australia // Epidemiol. and infec., 1992. vol.108, N4, p.107-113.
Shahbazi A., Asfaram Sh., Fallah E., Khanmohammadi M., et al. Identification of sarcocystis tenella and sarcocystis arieticanis isolated from slaughtered sheep in Tabriz abattoir using parasitological and PCR-rflp methods // Journal of comparative pathobiology, 2013, v.2, №41, p. 959-964.
Smith, M.O., George, L.W. Diseases of the nervous system. In: Smith, B.P. (Eds): Large Animal Internal Medicine. Mosby, Elsevier, St. Louis. 2009.
Stephan R, Loretz M, Eggenberger E, Grest P, Basso W, Grimm F. Sacrocystis hjorti lesions in hunted red deer in Switzerland // Schweiz Arch Tierheilkd. 2012, v.154(12), p.539-542.
Stojecki K, Karamon J, Sroka J, Cencek T. Molecular diagnostics of Sarcocystis spp. infections // Pol J. Vet. Sci. 2012, v.15, №3, p.589-596.
Stronen A.V., Sallows T., Forbes G.J., Wagner B., et al. Diseases and parasites in wolves of the Riding Mountain National Park region, Manitoba, Canada //J Wildl Dis., 2011, v.47, №1, p.222-2277.
Svobodova V., Nevole M.. Use of ELISA for the diagnostics of ovine Sarcocystosis // Folia Parasit., 1991, v.38, p.303-308.
Taylor M.A., Coop R.L., Wall, R.L. Veterinary parasitology, Third Edition, Blackwell Publishing, 2007, 874p.
Tenter A.M, Johnson A.M: Phylogeny of the tissue cyst-forming Coccidia // Adv Parasitol., 1997, v.39, p.69-139.
Titilincu A., Viorica M., R. Blaga, C.N. Bratu, V. Cozma. Epidemiology and etiology in sheep Sarcocystosis. // Bulletin UASVM, Veterinary Medicine, 2008, v.65, №2, p.49-54.
Valinezhad A., Ahmad O., Nasrollah A.. Sarcocystis and its Complications in Camels (Camelus dromedarius) of Eastern Provinces of Iran// Korean J Parasitol., 2008, Vol. 46, № 4, p.229-234.
Vangeel L, Houf K, Geldhof P, De Preter K, et al.. Different Sarcocystis spp. are present in bovine eosinophilic myositis // Vet Parasitol., 2013, v.197, №3-4, p.543-548.
Vergles Rataj A, Posedi J, Zele D, Vengušt G. Intestinal parasites of the red fox (Vulpes vulpes) in Slovenia. // Acta Vet Hung., 2013, №16, p.1-9.
Wilairatana P, Radomyos P, Radomyos B, Phraevanich R, et al. Intestinal sarcocystosis in Thai laborers // Southeast Asian J. Trop Med. Public. Health, 1996, №27, p.43-46.
Woldemeskel M, Gumi B. Prevalence of Sarcocysts in one-humped camel (Camelus dromedarius) from Southern Ethiopia // J.Vet Med B Infect Dis Vet Public Health, 2001, v.48, p.223-226.
Wong KT, Pathmanathan R. High prevalence of human skeletal muscle sarcocystosis in south-east Asia. Trans R Soc Trop Med Hyg, 1992, v. 86, p. 631-632.
Xiang Z, Chen X, Yang L, He Y, Jiang R, Rosenthal BM, et al. Non-invasive methods for identifying oocysts of Sarcocystis spp. from definitive hosts // Parasitol Int. 2009, v.58, №3, p.293-296.
Zhao-Qing Yang, Qing-Qing Li, Yang-Xian Zuo, et al. Characterization of Sarcocystis species in domestic animals using a PCR-RFLP analysis of variation in the 18S rRNA gene: a cost-effective and simple technique for routine species identification // Experimental Parasitology, 2002, v.102, p. 212–217
Abdulalim A, Göz Y. Hakkari Belediye Mezbahasında Kesilen Keçilerde Sarcosporidiosis’in Yaygınlığı // YYU Veteriner Fakultesi Dergisi, 2013, c.24, №1, s.1-3
Aldemir O.S, Dik B.. Koyunlardaki Sarcocystis türlerinin RAPD-PCR ile teşhisi // Türkiye Parazitol Derg, 2003, №27(4), p.255-259.
Aydenizöz M.Ö, Karaer Z., Aycan N.I., et al., Kirikkale belediye mezbahasinda kesilen koyunlarda sarcocystis türlerinin yayginliği // Türkiye Parazitoloji Dergisi, 2007, V.31 №4, p.272-276.
Biasibetti E., Chiesa F., Tursi M., Civera T., Capucchio M.T. Bovine eosinophilic myositis: role of Sarcocystis spp. / LXVII Convegno Nazionale S.I.S.Vet Società Italiana delle Scienze Veterinarie, 2013, p.14
Memmedov İ. Nahcivan özerk cumhuriyetinde bazi kanatlilarda sarcocystis türlerinin yayginliği // Kafkas Univ Vet Fak Derg, 2010, v.16, №5, s.857-860.
Tüzer E, Demir S. Bursa yöresinde koyunlarda Sarcosporidiosis // Vet Fak Derg., 1987, v.13, №1, p.12-20.
Grikieniene J. Zmogus kaip sarkocistozes uzkrato saltinis. Infekcines patologijos klausimai Lietuvoje / Respublikines mikrobiology, epidemiology infekcionisty mokslines konferencijos darby rinkinys. lapkricio 16-17, Siauliai, 1989b, p.174-177.