1.6.2.
Duzluluq stresi nəticəsində bitki genomunun
quruluş və funksional fəallığında baş verən dəyişikliklər
Bitkilərin stres amillərə cavab reaksiyaları müxtəlifdir,
bu reaksiyalar içərisində isə ən önəmlisi genetik aparatın re-
aksiyasıdır. Bu reaksiya, DNT-nin quruluş vəziyyətinin dəyi-
şilməsində və funksional fəallığının, yəni transkripsiya inten-
sivliyinin yüksəlməsində özünü göstərir.
Müəyyən edilmişdir ki, bitkilərin qeyri əlverişli mühit
şəraitinə davamlılığı, hüceyrə nüvəsində xromatinin quruluş
vəziyyəti və funksional fəallığının dəyişməsi ilə idarə olunur
[31, 51, 91, 105, 106]. Xromatində DNT-nin quruluş vəziyyə-
tinin dəyişməsi, bir tərəfdən qısa müddətli təsirə malik ol-
maqla qeyri əlverişli mühit şəraitinə uyğunlaşmanı həyata ke-
çirir, digər tərəfdən bu dəyişmələr irsi xarakter daşıyır və tə-
kamül prosesində rol oynayır [60].
Bitki hüceyrələrində genlərin ekspressiyası transkripsiya
və translyasiya zamanı tənzim olunur. Gen ekspressiyasının
transkripsiya səviyyəsində baş verməsi onun ən mühüm çə-
hətlərindən biridir və eukariot hüceyrələrdə bu proses xro-
matinin vəziyyətindən asılı olur. Yəni, transkripsiya prosesi
62
xromatinin funksional cəhətdən aktiv hissəsi olan dekompakt-
laşmış euxromatın sahəsində baş verir. Heteroxromatin sahəyə
isə xromatinin histon zülallarla sıx birləşmiş sahəsi aiddir ki,
həmin hissədə genlər azdır və ya bir çox genlər fəal olmur.
Orqanizmlər müxtəlif əlverişsiz mühit amillərinin təsirlərinə
məruz qaldıqda həmin şəraitə orqanizmin adaptivlik imkanlarını
artırmaq üçün heteroxromatinin bir hissəsi euxromatinə çevrilə
bilir və beləliklə də, DNT-nin fəal fraksiyaları artır [6].
Müxtəlif streslər, o cümlədən, quraqlıq və duzluluq kimi
çox geniş yayılmış abiotk stres amillər gen ekspressiyasında
dəyişiklərə səbəb olur. Tədqiqatlar nəticəsində aşkar olunmuş-
dur ki, stres amillərinin təsirindən DNT-nin müxtəlif fraksiya-
larının nisbəti dəyişir. Buğda [1, 3, 104], arpa [21, 24, 318,
319], tərəvəz [25], çiyələk [15, 16] və s. bitkilərlə aparılmış
təcrübələrin nəticələri göstərmişdir ki, davamlı genotiplərdə
duzluluq stresinin təsirindən genomun aktiv hissəsi olan
euxromatin DNT-sinin miqdarı artır və transkripsiya intensiv-
liyi yüksəlir. Əksinə, həssas sortlarda isə nuklein turşularının
deqradasiyası baş verir. Stresdən sonra fitohormon kompleksi
tətbiq edildikdə həm davamlı, həm də həssas bitki nümunə-
lərinin genomunda aktivləşmə prosesi baş verir və bu zaman
DNT fraksiyaları və RNT miqdarı kəskin artır. Quraqlıq stre-
sinin təsiri zamanı da oxşar nəticələr əldə edilmişdir [5, 21,
26, 27].
Duz stresinə davamlılığın mürəkəbliyinə və onun poligen
təbiətinə baxmayaraq, duz stresinə həssas genlərin böyük bir
hissəsi molekulyar çalışmalar nəticəsində artıq müəyyən edil-
mişdir. Molekulyar çalışmaların ən diqqətəlaiq müvəffəqiyyəti
protein elementlərin müəyyən edilməsi və RD29A/COR78 kimi
qoruyucu proteinlərin sintezinə nəzarət edən genlərin aşkar edil-
məsidir. Genom səviyyəsində əldə edilmiş nəticələr genetik
63
analizlərlə birləşdirildiyində, stres tolerantlğına nəzarət edən
amillər haqqında yetərincə məlumat əldə edilə bilinir [422].
Y. Shigehiro və əməkdaşları (1998) tərəfindən, 250 mili-
mol (mM) NaCl stresinə tolerantlıq göstərən Nlicotina pani-
culata-nın yarpaqlarından duzla əlaqədar genlərin izolə
edilməsi üçün aparılan təçrübədə xloroplastda karbonanhid-
raza genlərinin homoloqu izolə edilmişdir [354].
Dəniz suyu səviyyəsinə yaxın, yüksək qatılıqlı NaCl-lu
mühitdə duza həssas tütün hüceyrə kulturasının onlarca,
minlərcə hüceyrə generasiyasının olduğu görünmüşdür [210].
Halofit bitkilərdəki duza tolerant genlərin, aşağı səviyyəli
duz qatılığına adaptasiya olunmuş qlikofil genlərindən təka-
mül yolu ilə əmələ gəldiyi güman edilir. Misal olaraq,
Arabidopsis kimi qlikofillərin, halofitlərindən çox da fərqli
olmayan duza tolerantlı genlərə malik olduğunu göstərmək
olar [405].
H.Fromm və J.K.Zhu (1998) bir neçə bitki növündə, kal-
sium ionlarının bitkilərin duzluluğa davamlılığını tənzim-
lədiyini və artırdığını müəyyən etmiş, eyni zamanda bitkinin
duz stresinə qarşı tolerantlığında rol oynayan SOS3 lokusunun
xarakteristikasını vermişlər. SOS3-ün mutasiyaları duz stresi
zamanı böyümənin ingibirə olunmasına səbəb olan Na və Cl
ionlarına böyük həssaslıq göstərmiş və K
+
/Na
+
nisbəti azal-
mışdır. Bununla birlikdə, SOS3 mutantlarında duzluluğun
zərərli təsiri ekzogen kalsiumun yüksək qatılığı tormoz-
lanmışdır. Yeni izolə edilən genlərin duza tolerantlıqla əlaqəsi
genetik baxımdan qiymətləndirilmişdir.
J.Gohram (1998) bərk buğda və yumşaq buğdanın növ-
müxtəliflikləri və buğda x eqilops hibridlərinin amfidiploidləri
üzərində apardığı tədqiqatlarla müəyyən etmişdir ki, 4D xromo-
somunun uzun qolu üzərindəki gen və ya genlər bitkilərdə Na
64
miqdarını azaldır, onların duza qarşı müqavimətini zəiflədir, Na
və K-un bitkiyə daxil olmasına və köklərdən nəql edilməsinə təsir
göstərir, K/Na nisbətini dəyişir [197].
İsrail alimləri arpa (H. spontaneum) və yabanı buğda (T.di-
coccoides)-ın duza tolerantlığına görə seleksiyasını aparmış və iki
növə aid yabanı gen mənbələrinin, buğdada EK (elektriki ke-
çirmə) qabiliyyətinin 26 mmhos/cm, arpa bitkisində isə 35
mmhos/cm-ə qədər tolerantlıq göstərdiyini və bu gen mənbə-
lərinin duza tolerant çalışmalarda yetərin qədər fərqliliklər göstərə
biləçəyini açıqlamışlar [298].
V.A.Alina və b.(1991) on günlük duzluluq şəraitində
yetişdirilən arpa bitkisi xloroplastlarının membran fraksiya-
larında xlorofilin toplanmasının yüksəldiyini, zülal və RNT
miqdarının artdığını, duzluluq şəraitinin davam etdiyi 15
günlük bitkilərdə isə, xloroplastlarda xlorofilin ümumi miqda-
rının kəskin azaldığını müşahidə etmişlər. Ancaq zülal sintezi
tormozlanmamış və RNT-nin ümumi miqdarı artmışdır. 10
günlük bitkilərdən fərqli olaraq, 15 günlük bitkilərin membran
fraksiyalarında RNT, zülal və xlorofilin miqdarı azalmış,
lakin köklərdən ayrılmış qlikopeptidlər ümumi xloroplastlarda
RNT-nin miqdarının artığını göstərmişdir. Bu tədqiqatın nəti
-
cələrinə əsaslanan müəllif xloroplast membranlarının halını
bitkilərin duzluluğa davamlılıq meyarı kimi qəbul etməyi tək-
lif etmişdir [29].
N.Strizhov və əməkdaşları (1997) prolinin ali bitkilərdə geniş
yayılmış bir osmotik olduğunu, su gıtlığı və duzluluğa qarşı qlu-
tamit təbiətli prolin birləşmələrinin, onun sərhədlərini nəzarət
edən delta1-prolin-5 (P5CS)-in mRNT səviyyəsinin sürətlə artır-
dığını görmüş, P5CS-ın Arobidopsis-də iki fərqli şəkildə nizam-
lanan genlə şifrələndiyini müəyyən etmişlər. Bu gen (AtP5CS2),
sürətlə bölünən hüceyrə kulturalarında olan P5CS mRNT-nin
65
sintezini həyata keçirir. AtP5CS2 geni quraqlıq, duzluluq və az
qatılıqlı auksinin təsirilə aktivləşir və əmələ gələn transkriplər
toxumaya xas olan şəkildə nizamlanırlar [373].
Genetik mənbələr arasında duza davamlılıq baxımından fərq-
liliyin olmasına baxmayaraq, duza davamlı bitki növ və forma-
larının miqdarı olduqca azdır. Bu baxımdan da duza davamlı
növlərin araşdırılması və mövcud genetik potensialın dəyər-
ləndirilməsi vacibdir. Lakin duza davamlı genotiplərin seçilmə-
sində istifadə edilən fizioloji və molekulyar səviyyəli tədqiqatların
tam anlaşılmaması və bu stres amilinin çoxsaylı genlər tərəfindən
idarə edilən əlamət olması uyğun genetik modelin tapılmasını
çətinləşdirir [421].
1.7. Duzluluq stresinə davamlılıq mexanizmləri
Bitkilərdə duza dözümlülük qabiliyyəti bir çox elmi ədə-
biyyatlarda aşağıdakı mexanizmlərə əsasən verilmişdir [17,
116,287]: Bu mexanizmlərin birincisi qlikofitlərdə, ikinci və
üçüncüsü isə halofitlərdə duza davamlılığın əsas səbəbləri he-
sab olunur və onların sayəsində duza olan nəzarət üç səviy-
yədə həyata keçirilir:
1. Duzun daxil olmasına mane olmaq
2. Duzu özündə toplamaq
3. Duzu özündən xaric etmək
66
Şəkil 1.3. Bitkilərdə duzu məhdudlaşdıran proseslər və onların baş
vermə yeri; a) kök hüceyrələrinin seçici uduculuğu, b) ksilema bo-
rularına daxil olmaq, c) ksilema borularından axıdılmaq d) floema
borularına daxil olmaq, e) spesifik vəzlər vasivtəsilə xaric edilmək
uduculuğu
1.7.1. Bütöv bitkidə duzun miqdarına nəzarət
Duzu bitkinin orqanlarında məhdudlaşdıran mexanizmlər
haqqında son illərdə Stori və Vaker [372], Cesk və Hartonq [224]
və Munz [288] tərəfindən ətraflı məlumat verilmişdir. Bu
alimlərin fikirlərini müqayisə etdikdə, belə nəticəyə gəlmək
a
0
b
c
d
0
e
0
67
olar ki, ümumiyyətlə bitkilərin müxtəlif orqanlarında duzu nə-
zarət altına almaq üçün beş əsas nöqtə mövcuddur (Şəkil 1.3).
Bu nöqtələrdə duz bitkidə aşağıdakı proseslərə əsasən pay-
lanır;
a.
Kök hüceyrələrinin seçici uduculuğu
Torpaq məhlulundakı Na
+
və Cl
-
ionları osmos təziqinin
təsiri nəticəsində ilk növbədə ekzoderma qatının hüceyrələri
arasındakı boşluqlara doğru hərəkət edirlər. Bundan sonra
endoderma qatına daxil olmaq üçün hər iki yol (apoplastik və
simplastik) mümkündür. Lakin, ionların simplastik yola daxil
olmaması daha önəmlidir və kök hüceyrələri seçici udma qa-
biliyyətinə malik olduğundan, duzu bu yoldan uzaqlaşdır-
mağa çalışırlar [286]. Apoplastik yol, duzun bitkiyə əsas gi-
riş yoludur, burada ancaq bir təbii anatomik xüsusiyyətinə
görə, duzun girişini məhdudlaşdırmaq mümkündür. Bu da
endoderma qatını əhatə edən kaspari kəməridir ki, qliko-
fitlərdə incə olduğuna, yaxud heç mövcud olmadığına görə
[18], duzun qarşısında möhkəm bir maneə yarada bilmir.
b. Duzun ksilema borularına daxil olması
Torpaqdan udulmuş məhlul, hüceyrələrin arasındakı yol-
lar və boşluqlar vasitəsilə (apoplastik yolu) və ya hüceyrədən-
hüceyrəyə (simplastik yolu) keçib, ksilema borularına daxil
olur. Burada nəzarət, ancaq ksilema borusunun hüceyrələri
tərəfindən həyata keçir, çünki bu hüceyrələr K
+
ionlarını, Na
+
ionlarına görə artıq toplamaq gücünə malikdilər [286].
c. Duzun ksilema borusundan axıdılması
Na
+
ionları bəzi bitkilərin üst hissələrində, o cümlədən,
budaqların aşağısında, yarpaqların saplağı və hətta ayasında
toplanır. Bu səviyyə, bir nəzarət mexanizmi sayılır və mərkəzi
silindir hüceyrələrinin funksiyaları ilə əlaqədardır. K
+
ionları
həmin hüceyrələrdə Na
+
ionları ilə mübadilə olunur və təd-
68
ricən qeyd olunduğu yerlərdə, habelə ağac növlərində gövdə-
nin odunlaşmış toxumalarında toplanır [138]. Bu mexanizm
Na
+
ionlarını transpirasiya istiqamətindən çıxardığına görə
yüksək əhəmiyyət daşıyır [130].
d. Duzun floema borularına daxil olması
Bir sıra duzadavamlı bitkilərdə natrium və xlor ionlarının
bir qismi floema borularına yol tapır. Bu bitkilərdə həmin
vəziyyəti müsbət dəyərləndirib və duzu inkişaf halında olan
toxumalardan uzaqlaşdıran mexanizm də hesab etmək olar.
Lakin həssas bitkilərdə, həmin borular vasitəsilə duz yenidən
kökün ucuna gaytarılır və hüceyrələrin dehidratlaşma səviy-
yəsini şiddətləndirir. Bu mexanizmin baş verməsi paxlalılarda
sübut olunmuşdur. Lakin, onlarda bir dözümlülük mexanizmi
kimi deyil, natrium ionlarının hüceyrələrdə yerləşməsində
(kompartmentləşməsində) fəaliyyət göstərir və ona görə də ef-
fektli olduğundan şübhə yaranır [244].
e. Duzun vəzlər və qovuqcuqlar vasitəsilə azad edil-
məsi
Yalnız halofitlər spesifik hüceyrələrə malik olaraq, duz
vəzlərini təşkil edib, onların vasitəsilə toplanmış duzun azad
olunmasına qadirdilər. Bu vəzlərin təşkil olunması 11 bitki
növündə aşkar edilmişdir. Duz qovuqculuğu isə anatomik cə-
hətdən vəzdən fərqli olaraq, duzu öz hüceyrələrinin mərkəzi
vakuolunda topladıqdan sonra parçalanır və beləliklə yığılmış
duz yarpağın üzərinə yayılır. Yayılmış duz isə ışığı əks etdi-
rərək, transpirasiyanın azalmasına müsbət təsir edir [127].
Beləliklə, bütün halofitlər duzun udulması, nəqli və ixrac
proseslərinə nəzarət üçün inkişaf etmiş mexanizmlərə malik-
dirlər. Lakin, qlikofitlər ancaq əvvəldəki üç mexanizmlər ilə
şoranlığa cavab verirlər [285]. Həmçinin bəzi bitkilərdə şo-
ranlığa qarşı müxtəlif morfoloji dəyişikliklər, o cümlədən,
69
yarpaqların kiçilməsi və ya lətlənməsi (parenxim qatının qa-
lınlaşması), budaq/kök nisbətinin yüksəlməsi, ağızcıqların
açıq saxlanılması və s. baş verir ki, bütövlükdə suyun itirilmə-
sini azaltmaq, duzu durultmaq və qaz mübadiləsini sabit sax-
lamaq üçün faydalıdırlar [130, 302].
1.7.2. Hüceyrələrdə duzun miqdarına nəzarət
Məlum olmuşdur ki, halofitlər və qlikofitlərdə sitoplazma
fermentlərinin şoranlığa qarşı reaksiyaları eynidir və indiyə-
dək bitkilərin davamlılıqla əlaqədar spesifik fermentlərə malik
olduqları haqqında heç bir məlumat verilməmişdir [242]. Hər
iki qrupa aid olan bitkilərin hüceyrələri normal həyat sürməsi
üçün, artıq duzu sitoplazmadan uzaqlaşdırmalıdır. Bu proses
iki istiqamətdə gedir [136, 153]:
1) Natrium ionlarını hüceyrənin xaricində tutmaq;
2) Daxil olmuş ionları vakoullarda yerləşdirmək
Aydındır ki, ikinci variant duza nəzarət üçün daha effekt-
lidir və halofitlər bu istiqamətdən faydalanaraq, sitoplazmanı
natrium ionlarının mənfi təsirlərindən qoruyurlar. Onlar həm-
çinin bu ionlardan bir osmolit maddə kimi istifadə edərək, su
balansını da tənzimləyirlər. Qlikofitlərdə isə natriumun sito-
plazmaya giriş sürəti onun vakoullara daxil olma sürətindən
artıqdır və ona görə də bu ion tədricən sitoplazmada toplan-
mağa başlayır [286]. Həmçinin bu bitkilər su balansını tən-
zimləmək üçün üzvi osmolitləri sintez etmək məcburiyyətin-
dədirlər ki, bu özü də quru maddənin təşkilini aşağı salır [207].
Beləliklə, qlikofitlərin arasında nisbi dözümlülük fərqləri, ancaq
onların hansı dərəcədə natriumu sitoplazmadan uzaq tutmaq
gücünə malik olduqlarından asılıdır.
70
1.7.3. Duzun miqdarına molekulyar səviyyədə
nəzarət
İon nəqlinin tənzimlənməsi, bitkilərin şoranlığa davamlılıq
prosesində ən önəmli amillərdən biri sayılır. Bu istiqamətdə,
membran zülalları ionların hüceyrəyə selektiv buraxılışında mühüm
rol oynayırlar. Bu seçici zülallar aşağıdakı qruplara ayrılır;
1) Sitoplazmadakı ATP-azalar;
2) Membranda yerləşmiş Na
+
/H
+
antiporterlər;
3) Tonoplastda yerləşmiş Na
+
/H
+
antiporterlər;
4) Kation kanalları
Natriumun kation olmasına baxmayaraq, məlum olmuşdur ki,
onun kation kanalları vasitəsilə hüceyrəyə daxil olması çox çətindir.
Lakin Na
+
/H
+
antiporterlər sayəsində sitoplazmadan çox təbii
şəkildə ixrac oluna bilir [257, 353]. Ümumiyyətlə, belə fərz etmək
olar ki, Na
+
ionunun hüceyrədən idxal və ixrac mərhələləri, hətta
vakoullarda saxlanılması tamamilə bu zülallardan asılıdır [199].
Tonoplastdakı Na
+
/H
+
antiporterlərini aktivləşdirən gen (NHX
1
)
pomidor və kələm bitkilərində müəyyən olunmuşdur. Həmçinin bu
genin aktivləşməsi nəticəsində şoranlığa davamlılığın artması
həmin bitkilərdə sübut edilmişdir [99]. Digər bir tədqiqatda, Arabi-
dopsis thaliana bitkisində də membrandakı Na
+
/H
+
antiporterlərini
aktivləşdirən gen (SOS
1
) müəyyən edilmiş və onun aktivləşməsi
haqqında oxşar məlumat verilmişdir [353]. Hüceyrənin şoranlıq
stresinə davamlılığında önəmli rol oynayan zülallarından biri də
pirofosfataza (PP-aza) fermentidir. Bu ferment H
+
ionlarını
vakoullara pompa (nasos) edərək, sitozolun turşuluğuna nəzarət
edir və beləliklə, elektrokimyəvi potensialın təmin edilməsində
iştirak edir [420]. Şəkil 1.4-də kök hüceyrələrində ion müba-
diləsiniin izahı Amtman və Sanderz [112] nəzəriyyəsinə əsasən
təsvir edilmişdir. Bu modelə görə, K
+
ionları həm spesifik
71
kariyerlərdən və həm də digər kanallardan (seçici daşıyıcılar
vasitəsilə) hüceyrəyə daxil olur. Na
+
ionları üçün xüsusi daşıyıcılar
mövcud deyildir. Odur ki, onlar K
+
ionları ilə rəqabət aparmaqla və
ya qeyri-selektiv kanallar vasitəsilə hüceyrəyə daxil ola bilirlər. Bu
şəraitdə ATP-azalar (P tipli) plazmalemanın daxilində proton
pompa edicisi kimi H
+
ionlarını hüceyrədən xaric edirlər. Həmin
mərhələdə enerji sərf olunaraq ADP molekulları meydana çıxır.
Məlumdur ki, ADP-nin yenidən fosforlaşması tənəffüsün
artmasına səbəb olur. Duzların yüksək qatılığının təsiri nəti-
cəsində bioloji oksidləşmənin tənəfüs dövrəsindəki alternativ
yolu fəallaşır, xeyli miqdarda H
2
O
2
əmələ gəlir və bu da hü-
Şəkil 1.4. Na
+
ionlarının vakuolda saxlanması və ya hücey-
rənin xaricinə daşınmasının molekulyar mexanizmi [112]
72
ceyrədə sərbəst radikalların iştirakı ilə oksidləşmə proseslərini
induksiya edir. Beləliklə də, biomembranlarda baş verən per-
oksid oksidləşməsi onların keçiriciliyini kəskin dəyişir, hidro-
litik reaksiyaları sürətləndirir və nəticədə zülalların parçalan-
masına və böyümə prosesinin dayanmasına səbəb olur [17].
Həmçinin tonoplastın səthində PP-azalar və ATP-azalar (V
tipli) eynilə H
+
ionlarını vakoulun daxilinə pompa edirlər.
Nəticədə plazmalemma və tonoplastın daxili və xarici ara-
sında elektrokimyəvi potensial fərqi yaranır və pH qradienti
turşluğa doğru artır. Bundan sonra membranlarda yerləşmiş
antiporterlər dövrəyə girir və bir H
+
ionunu udaraq, bir Na
+
ionunu paralel şəkildə xaric edirlər. Beləliklə, Na
+
ionları sito-
plazmada iki istiqamətdə (vakoulun daxilinə və hüceyrənin
xaricinə) daşınır. Bu nəticələr bir çox tədqiqat işləri ilə təsdiq
edilmişdir [136, 194, 311].
Həmçinin məlum olmuşdur ki,ümumiyyətlə xlor ionları
membranda yaranmış elektrokimyəvi qradient nəticəsində hə-
rəkət edib, V-tipli ATP-azaların fəallaşmasına səbəb olurlar
[401]. Bəzi duzadavamlı bitkilərdə (məsələn, xurma) xlor ion-
ları digər ionlar kimi osmos təzyiqinin tənzimlənməsində işti-
rak edirlər [212]. Qeyd etmək lazımdır ki, indiyədək mito-
xondri və xloroplastlardakı Na
+
daşıyıcılarının xarakterləri də-
qiq müəyyən edilməmiş və bu məsələ ətrafında çoxlu müba-
hisələr gedir [286].
1.8. Duza davamlılığın yoxlanılması
Bitkilərdə duzun kök hüceyrələrinə daxil olmasına mane
olmaq və ya transpirasiya istiqamətindən uzaqlaşdırmaq qabi-
liyyətləri, bitki seleksiyaçılarının qarşısında duran əsas məsə-
lələrdən biridir [198]. Bu strategiyanın əhəmiyyəti meyvə
bitkilərində daha da artıqdır [286]. Yuxarıda qeyd etdiymiz
73
kimi duzun bitkiyə təsiri iki fazaya bölünür. Ona görə də du-
zadavamlılıq yoxlanılan zaman, hər iki fazaya aid olan reak-
siyaları nəzərə almaq lazımdır.
Birinci fazada inkişaf və böyümə xarakterləri sürətlə
aşağı düşür, lakin ikinci fazanın təsirləri nisbətən uzun müd-
dət keçdikdən sonra aşkar olunur. Önəmlisi budur ki, ikinci
fazada duz transpirasiya istiqamətinə yol açır və onun toksik
ziyanları tədricən ortaya çıxır. Həmçinin məlum olmuşdur ki,
bu fazaya daxilolma müddəti şoranlığın dərəcəsi, bitkinin
dözümlülüyü və mühitin tempraturu (xüsusən kök zonasının
tempraturu) və s. kimi amillərin təsirinə görə dəyişilə bilər
[119]. Bununla əlaqədar, Fortmir və Şubert [189] qarğıdalı
bitkisinin şoranlığa həssas və dözümlü sortlarında göstərmiş-
lər ki, hər iki sortun inkişafı 100 mM NaCl duzunun ilk 4
həftə təsiri altında bərabər səviyyədə azalır və gözlənilən fərq-
lər ancaq həmin müddət keçdiqdən sonra gözə çarpır. Oxşar
nəticəni Munz və əməkdaşları [287] buğda bıtkisində əldə
etmişlər. Bu məlumatlara və bir çox mütəxəssislərin təklifinə
görə, artıq aşkar olunmuşdur ki, düzgün yoxlama təcrübələrini
ancaq ikinci fazanın reaksiyaları əsasında qurmaq lazımdır.
Topladığımız elmi mənbələrə əsasən söyləmək olar ki,
şoranlığın morfoloji, fizioloji və biokimyəvi xüsusiyyətlərə
təsirlərini öyrənməklə, bu stresin bitkilərə mənfi təsirlərini
aşkar etmək mümkündür. Lakin bu da məlumdur ki, həmin
stresin mənfi təsirlərini azaltmaq istiqamətində hələ çoxlu
problemlər mövcuddur. Bu problemlərin həllinin bir qismi o
cümlədən; suvarma metodlarının dəyişdirilməsi, şoran tor-
paqların dəfələrlə yuyulması və gübrələnməsi ilə əlaqədar
yeni təkliflər vermək kənd təsərüffatı sektorunun qarşısında
duran mühüm vəzifələrdəndir. Lakin digər qisminin həlli de-
mək olar ki, əsasən bitkilərin xüsusiyyətlərindən asılıdır. Mə-
74
sələn, morfoloji baxımdan, yarpaq sahəsinin kiçilməsi və ya
parenximin qalınlaşması su itkisini azaldır, fizioloji baxımdan
natrium ionunun kökə daxil olmasına mane olmaq yaxud onu
müdafiə etmək, həmin ionu vakoullarda yerləşdirmək və ya ən
azı transpirasiya istiqamətindən uzaq tutmaq və nəhayət bio-
kimyəvi baxımdan müxtəlif növlərdə osmolitlərin biosintez
gücünə malik olmaq, həmçinin də fermentativ (peroksidaza-
lar) aktivliyini artırmaq, bitkinin genotipindən asılı olan
xarakterlərdir. Baxmayaraq ki, son tədqiqatlarda bəzi osmo-
litlər süni şakildə laboratoriyalarda sintez edilir və ekzogen
istifadə üçün perspektivli hesab olunur, lakin burada əsas rol
bitkinin genetik xüsusiyyətlərinə aiddir. Odur ki, hazırda ge-
netik cəhətdən şoranlığa dözümlü genotipləri əldə etmək əsas
strategiya kimi tədqiqatçılar tərəfindən diqqətlə izlənilir. Bu-
nunla əlaqədar, klassik metodlarla bitkilərdə bir çox seleksiya
işləri aparılır. Eyni zamanda biotexnologiya kimi yeni elm-
lərdən istifadə olunur və gen-köçürmə (transfer) metodları ilə
yuxarıda qeyd olunmuş hər hansı xarakteri təmsil edən geni,
kommersiya sortlarına köçürmək üçün davamlı çalışmalar
aparılır.
|